Autorskie Wkłady:SB i YEK wymyślili i zaprojektowali strukturę i treść recenzji. SB przeanalizował dane i napisał manuskrypt. EEM, MS, HB, NM, LK i YEK przyczynili się do napisania — recenzji i redagowania. YEK Nadzorował projekt. Wszyscy autorzy przeczytali i zaakceptowali opublikowaną wersję manuskryptu.

Glikozyd cistanche może również zwiększać aktywność SOD w tkankach serca i wątroby oraz znacznie zmniejszać zawartość lipofuscyny i MDA w każdej tkance, skutecznie wymiatając różne reaktywne rodniki tlenowe (OH-, H₂O₂, itp.) i chroniąc przed uszkodzeniem DNA spowodowanym przez rodniki OH. Glikozydy fenyloetanoidowe Cistanche mają silne zdolności wymiatania wolnych rodników, wyższą zdolność redukującą niż witamina C, poprawiają aktywność SOD w zawiesinie plemników, zmniejszają zawartość MDA oraz mają pewien wpływ ochronny na funkcję błony plemników. Polisacharydy Cistanche mogą zwiększać aktywność SOD i GSH-Px w erytrocytach i tkankach płuc eksperymentalnie starzejących się myszy wywołaną przez D-galaktozę, a także zmniejszać zawartość MDA i kolagenu w płucach i osoczu oraz zwiększać zawartość elastyny, mają dobry efekt zmiatania DPPH, przedłuża czas niedotlenienia u starzejących się myszy, poprawia aktywność SOD w surowicy i opóźnia fizjologiczną degenerację płuc u doświadczalnie starzejących się myszy Eksperymenty z degeneracją morfologiczną komórek wykazały, że Cistanche ma dobrą zdolność przeciwutleniającą i ma potencjał, aby być lekiem do zapobiegania i leczenia chorób związanych ze starzeniem się skóry. Jednocześnie echinakozyd w Cistanche ma znaczną zdolność wychwytywania wolnych rodników DPPH i ma zdolność wychwytywania reaktywnych form tlenu i zapobiegania degradacji kolagenu wywołanej przez wolne rodniki, a także ma dobry wpływ naprawczy na uszkodzenia anionowe wolnych rodników tyminy.

Kliknij Korzyści z tabletek Cistanche

【Więcej informacji:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Finansowanie:Badania te zostały sfinansowane przez Fundację OCP Phosboucraâ, Laâyoune, Maroko, grant nr PR008.

Oświadczenie Instytucjonalnej Komisji Rewizyjnej:Nie dotyczy.

Oświadczenie o świadomej zgodzie:Nie dotyczy.

Oświadczenie o dostępności danych:Udostępnianie danych nie dotyczy tego artykułu, ponieważ podczas niniejszego badania nie wygenerowano ani nie przeanalizowano żadnych zestawów danych.

Konflikt interesów:Autorzy oświadczają, że badanie zostało przeprowadzone przy braku jakichkolwiek powiązań handlowych lub finansowych, które mogłyby być interpretowane jako potencjalny konflikt interesów.

Bibliografia

1. Technologia komórek roślinnych — Twój partner w hodowli tkanek roślinnych. Zastosowanie technologii komórek roślinnych w przemyśle kosmetycznym. Dostępny online:

2. Badania pierwszeństwa. Wielkość rynku ekstraktów roślinnych osiągnie około 22,49 mld USD do 2030 r.

3. Badania pierwszeństwa. Wielkość rynku ekstraktów roślinnych o wartości około 22,49 mld USD do 2030 r.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Roślinne komórki macierzyste w kosmetykach: aktualne trendy i przyszłe kierunki. Nauka przyszłości. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Sławow, A.; Vasileva, I.; Pavlov A. Hodowla komórek roślinnych jako nowa technologia produkcji aktywnych składników kosmetycznych. inż. Nauka o życiu. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, Kalifornia; Puente-Garza, Kalifornia; García-Lara, S. Kultura tkanek roślinnych in vitro: środki do produkcji biologicznie aktywnych związków. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Postępy w podejściach biotechnologicznych roślin do rozmnażania i produkcji związków bioaktywnych. J. Etnofarmakol. 2021, 271, 113709. [Odsyłacz]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez S.; Juarranz, A. Środowiskowe stresory na starzenie się skóry. Mechanistyczne spostrzeżenia. Przód. Farmakol. 2019, 10, 759. [Odsyłacz]

9. Perez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomia, skóra (powłoka), naskórek; Wydawnictwo StatPearls: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, SH; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Mechanizmy molekularne starzenia się skóry i podejścia przeciwstarzeniowe. Int. J. Mol. nauka 2019, 20, 2126. [Odsyłacz]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Krecisz, B.; Suliga, E. Związki bioaktywne dla zdrowia skóry: przegląd. Składniki odżywcze 2021, 13, 203. [Odsyłacz]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Wrodzone komórki limfatyczne rezydujące w skórze – wrodzone opiekunowie i regulatory skóry. Trendy Immunol. 2020, 41, 100–112. [Odnośnik]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Obecny stan transporterów SLC i ABC w skórze i ich związek z metabolitami potu i chorobami skóry. Proteomy 2021, 9, 23. [Odsyłacz]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkery starzenia się komórek i starzenia się skóry. Przód. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Zmiany skórne podczas starzenia. W biochemii i biologii komórki starzenia: część II nauki kliniczne; Springer: Berlin/Heidelberg, Niemcy, 2019; Tom 91, s. 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel MK; Trost, A.; Richter, K. Stres oksydacyjny w starzejącej się skórze ludzkiej. Biomolekuły 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, A. Fernblock zapobiega uszkodzeniom komórek skóry wywołanym promieniowaniem widzialnym i podczerwonym. Int. J. Mol. nauka 2018, 19, 2250. [Odsyłacz]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Zdarzenia utleniania i starzenie się skóry. Odporność na starzenie Obj. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Fotobiologia ultrafioletowa w dermatologii. W świetle ultrafioletowym w zdrowiu ludzkim, chorobach i środowisku; Springer: Berlin/Heidelberg, Niemcy, 2017; Tom 996, s. 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Potencjalne korzyści zdrowotne składników bioaktywnych pochodzenia roślinnego: przegląd. Żywność 2021, 10, 839. [Odsyłacz]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. Profilowanie fitochemiczne ekstraktu z liści Ximenia Americana Var. Caffra i jej działanie przeciwutleniające, przeciwbakteryjne i przeciwstarzeniowe in vitro i in Caenorhabditis Elegans: podejście kosmeceutyczne i dermatologiczne. Utleniony. Med. Komórka. Longev. 2022, 2022, 3486257. [Odsyłacz]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Bioaktywne substancje pochodzenia roślinnego 30. Handb. Chemia spożywcza. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Struktura, skuteczność, mechanizmy i zastosowania przeciwutleniaczy pochodzenia roślinnego i zwierzęcego: przegląd. Przeciwutleniacze 2022, 11, 1025. [Odsyłacz]

25. Smetanska, I. Zrównoważona produkcja polifenoli i przeciwutleniaczy przez rośliny w kulturach in vitro. W bioprzetwarzaniu roślinnych systemów in vitro; Springer: Berlin/Heidelberg, Niemcy, 2018; s. 225–269.

26. Namdeo, A. Pozyskiwanie komórek roślinnych do produkcji metabolitów wtórnych: przegląd. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Bioprzetwarzanie kultur komórek roślinnych do masowej produkcji związków celowanych. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2009, 83, 809–823. [Odnośnik]

28. Wang, Sy; Chen, CT; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, MJ Jakość owoców, zdolność przeciwutleniająca i zawartość flawonoidów w jagodach uprawianych metodami ekologicznymi i konwencjonalnymi. J. Agric. Chemia spożywcza. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Produkcja i inżynieria terpenoidów w hodowli komórek roślinnych. Nat. chemia Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ Wpływ regulowanego nawadniania deficytowego na parametry jakościowe, karotenoidy i fenole różnych odmian pomidorów (Solanum Lycopersicum L.). Żywność Rez. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Łado, J.; Zacarías, L. Porównawcze fizjologiczne i transkrypcyjne badanie biosyntezy karotenoidów w białym i czerwonym grejpfrucie (Citrus Paradisi Macf.). Drzewo Genet. Genomy 2013, 9, 1257–1269. [Odnośnik]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, TC; Show, PL Ostatnie postępy w biorafinerii astaksantyny z Haematococcus Pluvialis. Biosurowiec. Techno. 2019, 288, 121606. [Odsyłacz]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Biotechnologiczna produkcja karotenoidów przy użyciu tanich substratów zależy od parametrów uprawy: przegląd. Int. J. Mol. nauka 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Roślinne polifenole: właściwości chemiczne, aktywność biologiczna i synteza. Angew. chemia Int. wyd. 2011, 50, 586–621. [Odnośnik]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. Heterologiczna produkcja resweratrolu w gospodarzach bakteryjnych: aktualny stan i perspektywy. Świat J. Microbiol. Biotechnologia. 2018, 34, 1–11. [Odnośnik]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Produkcja resweratrolu w rekombinowanych mikroorganizmach. Aplikacja Otaczać. Mikrobiol. 2006, 72, 5670–5672. [Odnośnik]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Inżynieria drożdży do produkcji na wysokim poziomie przeciwutleniaczy stilbenoidowych. nauka Rep. 2016, 6, 1–8. [Odnośnik]

38. Gaspar, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis do produkcji stilbenu. W Proceedings of the 28th International Conference on Polyphenols 2016, Wiedeń, Austria, 11 lipca 2016; DTU Dania: Kongens Lyngby, Dania, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Wójt, M.; Stenzel, A.; Gatgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Budowa szczepu platformy Corynebacterium Glutamicum do produkcji stilbenów i (2S) -flavanonów. Metab. inż. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: przegląd źródeł roślinnych, synteza, stabilność, modyfikacja i zastosowanie żywności. J.Sci. Rolnictwo spożywcze. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Regulacja metabolizmu malonylo-CoA poprzez syntetyczne antysensowne RNA w celu ulepszenia biosyntezy produktów naturalnych. Metab. inż. 2015, 29, 217–226. [Odnośnik]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, MA; Romero, LA Bioaktywność i biodostępność fitoenu oraz strategie poprawy jego produkcji. Fitochem. Obj. 2019, 18, 359–376. [Odnośnik]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Goleniowski M.; Cusido, RM; Palazon, J. Elicitation, Skuteczna strategia biotechnologicznej produkcji bioaktywnych związków o wysokiej wartości dodanej w fabrykach komórek roślinnych. Cząsteczki 2016, 21, 182. [Odsyłacz]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Biotechnologiczna produkcja taksolu i pokrewnych taksoidów: stan obecny i perspektywy. Środki przeciwnowotworowe Med. chemia Dawny. bież. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109-121. [Odnośnik]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Kultura komórek Coptis Japonica o wysokiej gęstości zwiększa produkcję berberyny. J. Chem. Techno. Biotechnologia. 1989, 46, 61–69. [Odnośnik]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Produkcja podofilotoksyny przez kultury komórek roślinnych Podophyllum Hexandrum w bioreaktorze. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [Odnośnik]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Wpływ światła na produkcję karotenoidów i ekspresję genów karotenogenezy w kalusie cytrusowym czterech genotypów. Acta Physiol. Zakład. 2011, 33, 2485–2492. [Odnośnik]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Wgląd w działania przeciwutleniające i potencjał przeciwstarzeniowy ekstraktu kalusa z Centella Asiatica (L.). nauka Rep. 2021, 11, 1–16. [Odnośnik]

49. Kikowska, mgr; Chmielewska M.; Włodarczyk A.; Studzińska-Sroka, E.; Żuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka M.; Thiem, B. Wpływ ekstraktu kalusa bogatego w pentacykliczne triterpenoidy z Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach o żywotności, morfologii i proliferacji normalnych fibroblastów ludzkiej skóry. Cząsteczki 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, RW; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Kwas transcynamonowy osłabia fotostarzenie wywołane promieniowaniem UVA poprzez hamowanie aktywacji AP-1 i indukcję genów przeciwutleniających, w których pośredniczy Nrf{10}}w fibroblastach ludzkiej skóry. J. Dermatol. nauka 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panti, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Przygotowanie, charakterystyka i aktywność biologiczna miejscowych składników przeciwstarzeniowych w wyciągu z kalusa cytrusowego Junos. Cząsteczki 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bajarmunk, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Korzystny wpływ Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos Extract na starzenie się i przeciwutleniacze in vitro i in vivo. Toksykol. Rez. 2021, 37, 71–83. [Odnośnik]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Ustanowienie kultur kalusa i zawiesiny komórkowej owoców jabłka Granny Smith i aktywności antytyrozynazy ich ekstraktów. nauka Hortic. 2021, 286, 110222. [Odsyłacz]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; mgr Olszewska; ˙Zbikowska, HM Waloryzacja potencjału fotoochronnego fitochemicznie standaryzowanego ekstraktu z liści oliwki (Olea Europaea L.) w fibroblastach skóry ludzkiej napromieniowanych promieniowaniem UVA. Cząsteczki 2022, 27, 5144. [Odsyłacz]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. Nowa rola ginsenozydu RG3 w zapobieganiu starzeniu się za pośrednictwem mitochondriów w ludzkich fibroblastach skóry napromieniowanych promieniowaniem ultrafioletowym. J. Żeń-szeń Res. 2019, 43, 431–441. [Odnośnik]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Efekty przeciwstarzeniowe Piper Cambodianum P. Fourn. Wyciąg z normalnych ludzkich fibroblastów skórnych i modelu gojenia się ran u myszy. Clin. Interw. Starzenie się 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Wywoływanie Pueraria Candollei Var. Komórki zawieszone Mirifica obiecują potencjał przeciwutleniający, sugerując działanie przeciwstarzeniowe. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2021, 145, 29–41. [Odnośnik]

58. Kim, HJ; Park, JW Działanie przeciwstarzeniowe Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract. trop. J. Pharm. Rez. 2017, 16, 1579–1588. [Odnośnik]

59. Kim, HR-R; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, SI; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Wpływ ekstraktu Tiarella Polyphylla D. Don Callus na fotostarzenie w komórkach fibroblastów ludzkiego napletka Hs68. Nat. Szturchać. Komuna. 2021, 16, 1934578X211016970. [Odnośnik]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Zastępowanie części wegetatywnych roślin ekstraktami z komórek kalusa: studium przypadku z Woodfordia Fruticosa Kurz. – Silny składnik preparatów do pielęgnacji skóry. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [Odnośnik]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Ochrona przed fotostarzeniem wywołanym promieniowaniem UVB przez wodny ekstrakt z herbaty Fuzhuan-Brick za pośrednictwem MAPK/Nrf{4}}, w którym pośredniczy regulacja w dół MMP{6}}. Składniki odżywcze 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, LS; Chang, SH; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. Dermato-ochronne działanie lucydonu z Lindera Erythrocarpa poprzez indukcję genów przeciwutleniających za pośrednictwem Nrf{10}}w keratynocytach skóry ludzkiej napromieniowanych promieniowaniem UVA. J. Funkcja. Żywność 2015, 12, 303–318. [Odnośnik]

63. Cho, WK; Kim, HI; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Piosenka, J.; Kim, J.; Shin, DS; Radość.; Choi, H.; Lee, JH Przeciwstarzeniowe działanie wyciągu z kultury kalusa Leontopodium Alpinum (Edelweiss) poprzez profilowanie transkryptomu. Geny 2020, 11, 230. [Odsyłacz]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Działania przeciwutleniające i przeciwstarzeniowe kultury kalusa z trzech odmian ryżu. Kosmetyki 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Potencjalne zastosowanie ekstraktu z owoców Amla (Phyllanthus Emblica L.) do ochrony keratynocytów skóry przed zapaleniem i apoptozą po napromieniowaniu UVB. Przeciwutleniacze 2021, 10, 703. [Odsyłacz]

66. Farras, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, poseł; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) jako źródło związków bioaktywnych: profil polifenolowy, cytotoksyczność i właściwości cytoochronne w różnych liniach komórkowych. Przód. Farmakol. 2021, 12, 727528. [Odsyłacz]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panti, VK; Kim, HJ; Park, JW Przygotowanie i charakterystyka ekstraktu kalusa z Pyrus Pyrifolia i badanie jego wpływu na regenerację skóry. Kosmetyki 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petruk, G.; Osman S.; El Raey, MA; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Izolacja mirycytryny i 3,5-di-O-metylogossypetyny z Syzygium Samarangense i ocena ich udziału w ochronie keratynocytów przed stresem oksydacyjnym poprzez aktywację szlaku Nrf{5}}. Cząsteczki 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Mikrorozmnażanie imbiru (Zingiber Officinale Roscoe) „Bentong” i ocena jego wtórnych metabolitów i działań przeciwutleniających w porównaniu z rośliną rozmnażaną konwencjonalnie. Rośliny 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Ektopowa ekspresja produkcji pigmentu antocyjanowego 1 (PAP1) poprawia właściwości przeciwutleniające i antymelanogenne żeń-szenia (Panax Ginseng CA Meyer) owłosione korzenie. Przeciwutleniacze 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane R.; Fogliano V.; Colucci, G. Brassica Rapa Hairy Root Extracts Promują depigmentację skóry poprzez modulację produkcji i dystrybucji melaniny. J. Kosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petruk, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Pochodne malwidyny i cyjanidyny z owoców Açai (Euterpe Oleracea Mart.) Przeciwdziałają stresowi oksydacyjnemu wywołanemu promieniowaniem UV-A w unieśmiertelnionych fibroblastach. J. Photochem. Fotobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni S.; Chrispeels, MJ Mieszanina peptydów i cukrów pochodzących ze ścian komórkowych roślin zwiększa reakcje obronne roślin na stres i łagodzi związane ze starzeniem zmiany molekularne w hodowanych komórkach skóry. J. Biotechnologia. 2010, 145, 367–376. [Odnośnik]

74. Słońce, Z.; Park, Sycylia; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris Łagodzi uszkodzenia skóry wywołane promieniowaniem UVB poprzez hamowanie MAPK/AP{1}} i aktywację układu przeciwutleniającego Nrf2-ARE. J. Komórka. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [Odnośnik]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Wzgórze, J.; Gibertoni S.; Colucci, G. Wyciąg z komórek macierzystych pomidora, zawierający związki przeciwutleniające i czynniki chelatujące metale, chroni komórki skóry przed uszkodzeniami wywołanymi metalami ciężkimi. Int. J. Kosmet. nauka 2011, 33, 543–552. [Odnośnik]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Wywoływanie chitozanu z Isatis Tinctoria L. Hodowle korzeni włochatych w celu zwiększenia wydajności flawonoidów i ekspresji genów oraz powiązanej aktywności przeciwutleniającej. Ind. Uprawy Prod. 2018, 124, 28–35. [Odnośnik]

77. Iza, T.; Umar S.; Mujib, A.; Sharma, poseł; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Wtórny metabolizm farmaceutyków w roślinnych kulturach in vitro: strategie, podejścia i ograniczenia w osiąganiu wyższej wydajności. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2018, 132, 239–265. [Odnośnik]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, TK; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Produkcja biomasy i związków bioaktywnych z kultur korzeni przybyszowych Polygonum multiflorum z wykorzystaniem bioreaktorów Air-Lift. J. Biotechnologia roślin. 2015, 42, 34–42. [Odnośnik]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Hairy Root Cultures: odpowiedni system biologiczny do badania wtórnych szlaków metabolicznych w roślinach. inż. Nauka o życiu. 2013, 13, 62–75. [Odnośnik]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Założenie kultur korzeni szałwii lekarskiej L. do produkcji kwasu rozmarynowego. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [Odnośnik]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Owłosione korzenie Dracocephalum Moldavica: zawartość kwasu rozmarynowego i potencjał przeciwutleniający. Acta Physiol. Zakład. 2013, 35, 2095–2103. [Odnośnik]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elite Hairy Roots of Ocimum Basilicum jako nowe źródło kwasu rozmarynowego i przeciwutleniaczy. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2016, 126, 19–32. [Odnośnik]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saidnia S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Badanie porównawcze zawartości kwasu rozmarynowego w niektórych roślinach z rodziny Labiatae. farmacja. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Roślinne kultury tkankowe jako źródła składników do zastosowań w pielęgnacji skóry. rok Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. Wielość kultur korzeni włochatych: płodne możliwości. Nauka o roślinach. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, MA; Lee, K.; Kim, K.; Hyun, TK Nadprodukcja antocyjanów w owłosionych korzeniach żeń-szenia zwiększa ich działanie przeciwutleniające, przeciwdrobnoustrojowe i przeciw elastazie. J. Biotechnologia roślin. 2021, 48, 100–105. [Odnośnik]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Mikrorozmnażanie opuncji i innych gatunków kaktusów poprzez proliferację pędów pachowych: kompleksowy przegląd. Przód. Nauka o roślinach. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. Kultura in vitro lawendy (Lavandula spp.) I produkcja metabolitów wtórnych. Biotechnologia. adw. 2013, 31, 166–174. [Odnośnik]

89. Goyali, J.; Igamberdiew, A.; Debnath, S. Mikrorozmnażanie wpływa nie tylko na morfologię owoców borówki niskiej (Vaccinium angustifolium Ait.), ale także na jej właściwości lecznicze. W Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Kanada, 17–19 czerwca 2013 r.; s. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Suleiman, M.; Abbas S.; Wink, M. Rozmnażanie in vitro rośliny leczniczej Ziziphora Tenuior L. i ocena jej działania przeciwutleniającego. Arabia J. Biol. nauka 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Indukowana światłem produkcja związków przeciwdepresyjnych w etiolowanych kulturach pędów Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae). Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Aktywnosc przeciwutleniajaca ekstraktów z kultur in vitro Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [Odnośnik]

93. Al Khateeb, W.; Husajn, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. Rozmnażanie in vitro i charakterystyka zawartości fenolowej wraz z właściwościami przeciwutleniającymi i przeciwdrobnoustrojowymi Cichorium Pumilum Jacq. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2012, 110, 103–110. [Odnośnik]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. Rozmnażanie in vitro Caralluma tuberculata i ocena potencjału przeciwutleniającego. Biologia (Bratysław) 2014, 69, 341–349. [Odnośnik]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria S.; Hamza, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Mikrorozmnażanie Alocasia Longiloba Miq i porównawcze właściwości przeciwutleniające ekstraktów etanolowych z rośliny uprawianej w terenie, rozmnażane in vitro i in vitro kalus. Rośliny 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plant Callus: Mechanizmy indukcji i represji. Komórka roślinna 2013, 25, 3159–3173. [Odnośnik]

97. Fehér, A. Callus, Odróżnicowanie, totipotencja, embriogeneza somatyczna: co oznaczają te terminy w erze molekularnej biologii roślin? Przód. Nauka o roślinach. 2019, 10, 536. [Odsyłacz]

98. Abdulhafiz, F. Technologie hodowli komórek roślinnych: obiecujące alternatywy dla produkcji wysokowartościowych metabolitów wtórnych. Arab. J. Chem. 2022, 15, 104161. [Odsyłacz]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Technologia hodowli komórek roślinnych: nowe źródło składników. OPIEKA 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Hodowla komórek: innowacyjne podejście do produkcji roślinnych substancji czynnych; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Wielka Brytania, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Produkcja biomasy i związków bioaktywnych z kultur zawiesiny komórkowej Panax Quinquefolium L. i Glycyrrhiza Uralensis Fisch. w produkcji biomasy i związków bioaktywnych z wykorzystaniem technologii bioreaktorowej; Springer: Berlin/Heidelberg, Niemcy, 2014; s. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Wytwarzanie przez kulturę kalusa Onosma Bulbotrichom jako aktywnego składnika farmaceutycznego. Iranu. J. Pharm. Rez. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Człowiek, S .; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Produkcja flawonoidów i polisacharydów przez dodanie elicytora w różnych procesach hodowli komórkowej Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. Zakład. 2013, 35, 679–686. [Odnośnik]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW jasmonian metylu stymuluje produkcję 20- hydroksyekdyzonu w hodowlach zawiesiny komórkowej „Achyranthes Bidentata”. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos Cell Culture Extract do ochrony przed uszkodzeniami UV. Toaleta kosmetyczna 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Skamardela S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Nowatorska inżynieria skóry właściwej do badań fotouszkodzeń in vitro. J. Tkanki inż. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Badania aktywności i stabilności werbaskozydu, nowego przeciwutleniacza, w preparatach dermokosmetycznych i farmaceutycznych do stosowania miejscowego. Cząsteczki 2011, 16, 7068–7080. [Odnośnik]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis do zastosowań przeciwzmarszczkowych i tonizujących skórę. kosmetyk. Toaleta. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Hodowle zawiesinowe komórek roślin leczniczych: zastosowania farmaceutyczne i wysokowydajne strategie dla pożądanych metabolitów wtórnych. Krytyk. Ks. Biotechnolog. 2016, 36, 215–232. [Odnośnik]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Pozyskiwanie: narzędzie do wzbogacania bioaktywnej kompozycji żywności. Cząsteczki 2014, 19, 13541–13563. [Odnośnik]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Molekularne aspekty wczesnych etapów wywoływania metabolitów wtórnych w roślinach. Nauka o roślinach. 2007, 172, 861–875. [Odnośnik]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: narzędzie biotechnologiczne do zwiększonej produkcji metabolitów wtórnych w kulturach korzeni włochatych. inż. Nauka o życiu. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Interaktywny wpływ światła monochromatycznego o szerokim spektrum na produkcję fitochemiczną, aktywność przeciwutleniającą i biologiczną kultur kalusa Solanum Xanthocarpum. Cząsteczki 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Stresy abiotyczne Wywoływanie wzmacnia produktywność Cardoon Calli jako biofabryk do produkcji wyspecjalizowanych metabolitów. Przeciwutleniacze 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Gene-to-Metabolite Network for Biosynteza Lignanów w MeJA-Elicited Isatis Indigotica Hairy Root Cultures. Przód. Nauka o roślinach. 2015, 6, 952. [Odsyłacz]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Słońce, HD-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, ML. Poprawa akumulacji związków bioaktywnych w kulturach komórkowych Orostachys Cartilaginous A. Bor. poprzez elicytację kwasem salicylowym i wpływ ekstraktu komórkowego na aktywność bioaktywną. Ind. Uprawy Prod. 2019, 139, 111570. [Odsyłacz]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Wywołana przez elicytor produkcja biomasy i farmaceutycznych związków fenolowych w zawiesinie komórkowej kultury palmy daktylowej (Phoenix Dactylifera L.). Cząsteczki 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Duran, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC Optymalizacja produkcji flawonoidów w hodowli komórek roślinnych Thevetia Peruviana wywołanej jasmonianem metylu i kwasem salicylowym. Braz. Łuk. Biol. Techno. 2021, 64, e21210022. [Odnośnik]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Wywoływanie jasmonianu metylu zwiększa produkcję glicyryzyny w kulturach owłosionych korzeni Glycyrrhiza Inflata. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [Odnośnik]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Stymulacja akumulacji związków fenolowych i aktywność przeciwutleniająca w hodowli in vitro Salvia Tebesana Bunge w odpowiedzi na elicytory nano-TiO2 i jasmonian metylu. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2022, 149, 423–440. [Odnośnik]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Wzmocnienie związków stilbenu i działanie przeciwzapalne jasmonianu metylu i cyklodekstryny wywołanej kulturą owłosionych korzeni orzeszków ziemnych. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2018, 132, 165–179. [Odnośnik]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Wywoływanie metabolitów przeciwutleniaczy w gatunkach Musa w hodowli pędów in vitro przy użyciu sacharozy, temperatury i kwasu jasmonowego. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2021, 146, 225–236. [Odnośnik]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulacja wzrostu kalusa i metabolitów wtórnych w różnych gatunkach grasicy i mikropropagacji Zataria Multiflora pod wpływem stresu nanocząstek ZnO. Biotechnologia. Aplikacja Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil A.; Mashwani, Z.-R. Nanocząsteczki srebra wywołane w kulturach kalusa in vitro w celu akumulacji biomasy i metabolitów wtórnych w Caralluma Tuberculata. Artif. Komórki Nanomedycyna Biotechnologia. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Wpływ nanocząstek srebra na produkcję związków fenolowych i aktywność biologiczną w kulturach korzeni włochatych Cucumis anguria. Acta Biol. Zawieszony. 2018, 69, 97–109. [Odnośnik]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yucesan, B.; Gurel, E.; Kausar R.; Zia, M. Nanocząsteczki CuO znacząco wpływają na kulturę in vitro, glikozydy stewiolowe i działanie przeciwutleniające Stevia rebaudiana Bertoni. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2017, 131, 611–620. [Odnośnik]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanocząstki z uwięzionym -tokoferolem: synteza, charakteryzacja i kontrolowane uwalnianie. Nanotechnologia 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Łojkowska E.; Staniszewska, I.; Maliński, E.; Szafranek, J. Identyfikacja metabolitów wtórnych w kulturach in vitro Ammi Majus traktowanych elicytorami. W Proceedings of the IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tampere, Finlandia, 2-7 lipca 2000; s. 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Zrównoważona produkcja biomasy i ważnych dla przemysłu metabolitów wtórnych w kulturach komórkowych samoleczenia (Prunella Vulgaris L.) wywołanych przez nanocząsteczki srebra i złota. Artif. Komórki Nanomedycyna Biotechnologia. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Jasnobrązowy, RX; Wu, J. Wydajna produkcja i odzyskiwanie diterpenoidowych garbników w kulturach owłosionych korzeni Salvia Miltiorrhiza z adsorpcją in situ, pozyskiwaniem i półciągłą operacją. J. Biotechnologia. 2005, 119, 416–424. [Odnośnik]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Pozyskiwanie biotyczne do produkcji skopolaminy przez kultury korzeni owłosionych Datura Metel. Mol. Biol. Rez. Komuna. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. Wpływ wywoływania na produkcję saponiny w hodowli komórkowej Panax Ginseng. Przedstawiciel komórek roślinnych 2001, 20, 674–677. [Odnośnik]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati S.; Mohagheghzadeh, A. Wpływ elicytorów na wzmocnienie biosyntezy podofilotoksyny w kulturach zawiesinowych Linum Album. DARU J. Pharm. nauka 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusido, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Wywoływanie różnych fenotypów transformowanych korzeni Panax Ginseng w celu ulepszenia produkcji ginsenozydu. Fizjol Roślinny. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [Odnośnik]

135. Murthy, HN; Lee, EJ; Paek, K.-Y. Produkcja metabolitów wtórnych z kultur komórkowych i narządów: strategie i podejścia do poprawy biomasy i akumulacji metabolitów. Kult Organów Tkanek Komórek Roślinnych. PCTOC 2014, 118, 1–16. [Odnośnik]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Zwiększenie akumulacji Rosavins w Rhodiola Rosea L. Rośliny uprawiane in vitro przez karmienie prekursorami. Agronomia 2021, 11, 2531. [Odsyłacz]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Wzmocnienie lignanów w kulturach owłosionych korzeni Linum Album przy użyciu aldehydu iglastego i kwasu metylenodioksycynamonowego. przygotowanie Biochem. Biotechnologia. 2016, 46, 454–460. [Odnośnik]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila S.; Hohtola, A. Biosynteza hiperforyny i adhiperforyny z prekursorów aminokwasów w kulturach pędów Hypericum perforatum. Fitochemia 2007, 68, 1038–1045. [Odnośnik]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, EJ; Paek, K.-Y. Ulepszona produkcja ginsenozydów w kulturach zawiesinowych żeń-szenia dzięki strategii uzupełniania średniego. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [Odnośnik]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, EJ; Paek, K.-Y. Ulepszona produkcja pochodnych kwasu kawowego w kulturach zawiesinowych jeżówki purpurowej dzięki strategii uzupełniania średniego. Łuk. Farmacja. Rez. 2007, 30, 945–949. [Odnośnik]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Zwiększona produkcja i uwalnianie taksolu w hodowlach zawiesin komórkowych Taxus Chinensis z wybranymi rozpuszczalnikami organicznymi i karmieniem sacharozą. Biotechnologia. Wałówka. 2001, 17, 89–94. [Odnośnik]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Przegląd i zasady bioinżynierii: sterowniki technologii Omics. W technologiach omicznych i bioinżynierii; Elsevier: Amsterdam, Holandia, 2018; s. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Produkcja roślinnych metabolitów wtórnych za pomocą narzędzi biotechnologicznych. Drugi. Aplikacja Metab.-Źródła 2018, 5, 81–99.

144. Vasquez SM; Abaskal, GGW; Leal, CE; Cardineau, Georgia; Lara, SG Zastosowanie inżynierii metabolicznej do zwiększenia zawartości alkaloidów w roślinach leczniczych. Metab. inż. Komuna. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Biotechnologia do produkcji metabolitów wtórnych roślin. Fitochem. Obj. 2002, 1, 13–25. [Odnośnik]

146. Oksman-Caldentey, KM; Arroo, R. Regulacja metabolizmu alkaloidów tropanowych w roślinach i kulturach komórek roślinnych. W inżynierii metabolicznej wtórnego metabolizmu roślin; Springer: Berlin/Heidelberg, Niemcy, 2000; s. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Hodowla komórek roślinnych do produkcji paklitakselu i innych taksanów. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Wtórne metabolity roślin leczniczych, zestaw 4 tomów: właściwości etnofarmakologiczne, aktywność biologiczna i strategie produkcji; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, USA, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Wpływ immobilizacji na wzrost komórek i zawartość alkaloidów w hodowli agregatów komórkowych Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Wzmocnienie produkcji chitozanazy przez immobilizację komórek Gongronella Sp. JG. Braz. J. Mikrobiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Wytwarzanie podofilotoksyny przez immobilizowane kultury komórkowe Juniperus Chinensis. pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130–1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, SF; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Badania nad produkcją niektórych ważnych metabolitów wtórnych z roślin leczniczych przez kultury tkanek roślinnych. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Aktualne podejście do produkcji wtórnych metabolitów roślin. J. Pharm. Nauka biologiczna. 2012, 4, 10. [Odsyłacz]

154. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Życie między dwoma światami: dwufazowe systemy kulturowe do produkcji roślinnych metabolitów wtórnych. Krytyk. Ks. Biotechnolog. 2013, 33, 1–22. [Odnośnik]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Wpływ wzbogacania ajmalicyny i czasu dodawania żywicy na produkcję alkaloidów indolowych z kultur komórkowych Catharanthus Roseus. Biotechnologia. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [Odnośnik]

156. Komaraiah, P.; Ramakryszna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Zwiększona produkcja Plumbagin w unieruchomionych komórkach Plumbago Rosea przez elicytację i adsorpcję in situ. J. Biotechnologia. 2003, 101, 181–187. [Odnośnik]

157. Klvana, M.; Legros R.; Jolicoeur, M. In Situ, strategia ekstrakcji wpływa na strumienie produkcji alkaloidów benzofenantrydyny w kulturach zawiesinowych Eschscholtzia Californica. Biotechnologia. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, MB-B; Zhang, W.; Ruan, C. Znacząco ulepszona produkcja Taxuyunnanine C w hodowlach zawiesin komórkowych Taxus Chinensis poprzez intensyfikację procesu powtarzanego pozyskiwania, karmienia sacharozą i adsorpcji in situ. Świat J. Microbiol. Biotechnologia. 2011, 27, 2271–2279. [Odnośnik]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Zwiększona produkcja antrachinonów z traktowanych adsorbentem hodowli zawiesinowych komórek Morinda Elliptica w strategii pożywki produkcyjnej. Biochemii Procesowej. 2007, 42, 757–763. [Odnośnik]

Zastrzeżenie/Uwaga wydawcy:Oświadczenia, opinie i dane zawarte we wszystkich publikacjach należą wyłącznie do poszczególnych autorów i autorów, a nie do MDPI i/lub redaktorów. MDPI i/lub redaktorzy zrzekają się odpowiedzialności za jakiekolwiek szkody wyrządzone ludziom lub mieniu wynikające z jakichkolwiek pomysłów, metod, instrukcji lub produktów, do których odnosi się treść.

【Więcej informacji:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】