Oznaczanie zawartości pięciu związków w nasieniu Rehmanniae i ustalenie jego odcisku palca metodą HPLC
Sep 27, 2024
Tabela 3 Wyniki testu regeneracji (n=6)
| Nazwa próbki | Ilość próbki/mg | Dodana ilość/mg | Zmierzona ilość/mg | Powrót do zdrowia/% | Średni odzysk/% | RSD/% |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Próbka zmielona D-1 | 3.6711 | 2.1130 | 5.7209 | 97.0 | ||
| Próbka zmielona D-2 | 3.6470 | 2.1130 | 5.7311 | 98.6 | 97.2 | 1.52 |
| Próbka zmielona D-3 | 3.6492 | 2.1130 | 5.7327 | 98.6 | ||
| Próbka zmielona D-4 | 3.6937 | 2.1130 | 5.7316 | 96.4 | ||
| Próbka zmielona D-5 | 3.7274 | 2.1130 | 5.7295 | 94.8 | ||
| Próbka zmielona D-6 | 3.6667 | 2.1130 | 5.7327 | 97.8 | ||
| Próbka soli nr 1 | 1.3359 | 1.9050 | 3.2021 | 98.0 | ||
| Próbka soli nr 2 | 1.3271 | 1.9050 | 3.1965 | 98.1 | 97.4 | 0.73 |
| Próbka soli nr 3 | 1.3279 | 1.9050 | 3.1817 | 97.3 | ||
| Próbka soli nr 4 | 1.3441 | 1.9050 | 3.2005 | 97.4 | ||
| Próbka soli nr 5 | 1.3563 | 1.9050 | 3.1874 | 96.1 | ||
| Próbka soli nr 6 | 1.3343 | 1.9050 | 3.1869 | 97.3 | ||
| Próbka owoców nr 1 | 0.1858 | 0.1831 | 0.3654 | 98.1 | ||
| Próbka owoców nr 2 | 0.1846 | 0.1831 | 0.3625 | 97.3 | 97.4 | 0.87 |
| Próbka owoców nr 3 | 0.1847 | 0.1831 | 0.3627 | 97.1 | ||
| Próbka owoców nr 4 | 0.1870 | 0.1831 | 0.3629 | 96.1 | ||
| Próbka Owoców nr 5 | 0.1887 | 0.1831 | 0.3691 | 98.5 | ||
| Próbka Owoców nr 6 | 0.1856 | 0.1831 | 0.3639 | 97.4 | ||
| Próbka mięsa A-1 | 0.1507 | 0.2043 | 0.3452 | 95.2 | ||
| Próbka mięsa A-2 | 0.1497 | 0.2043 | 0.3487 | 97.4 | 96.5 | 0.92 |
| Próbka mięsa A-3 | 0.1498 | 0.2043 | 0.3468 | 96.4 | ||
| Próbka mięsa A-4 | 0.1516 | 0.2043 | 0.3479 | 96.1 | ||
| Próbka mięsa A-5 | 0.1530 | 0.2043 | 0.3494 | 96.1 | ||
| Próbka mięsa A-6 | 0.1505 | 0.2043 | 0.3498 | 97.6 | ||
| Próbka włosów nr 1 | 0.4018 | 0.3583 | 0.7557 | 98.8 | ||
| Próbka włosów nr 2 | 0.3991 | 0.3583 | 0.7563 | 99.7 | 98.6 | 0.97 |
| Próbka włosów nr 3 | 0.4042 | 0.3583 | 0.7549 | 99.2 | ||
| Próbka włosów nr 4 | 0.3994 | 0.3583 | 0.7551 | 97.9 | ||
| Próbka włosów nr 5 | 0.4079 | 0.3583 | 0.7559 | 97.1 | ||
| Próbka włosów nr 6 | 0.4013 | 0.3583 | 0.7565 | 99.1 |
2.4 Oznaczanie próbek
Zebrane sześć partii Rehmannia przygotowano zgodnie z metodą opisaną w „2.2.2”, pobrano próbki i oznaczono zgodnie z warunkami chromatograficznymi opisanymi w „2.1”. Wyniki oznaczania zawartości przedstawiono w Tabeli 4. Wyniki pokazują, że spośród pięciu składników zawartość glikozydu rehmanniowego D jest najwyższa i waha się od 0,460% do {{1 0}}.730%; Na drugim miejscu znajduje się zawartość glikozydu leonuri, która waha się od 0,100% do 0,270%, a zawartość obu składników w próbkach z różnych obszarów produkcyjnych nie różni się znacząco. W próbce SX1, z wyjątkiem echinakozydu, zawartość pozostałych czterech składników jest znacznie wyższa niż w innych partiach próbek; zawartość echinakozydu, cistanchezydu A i werbaskozydu w Rehmannia glutinosa z różnych obszarów produkcji jest zupełnie inna i nieregularna.

ZIOŁO CISTANCHE ZDOBRA JAKOŚĆ KONSYSTENCJI
2.5 Ustalenie i ocena podobieństwa odcisku palca HPLC Rehmannia glutinosa
Chromatogramy i dane dotyczące oznaczania zawartości wieloskładnikowej w Rehmannia glutinosa zaimportowano do oprogramowania „Chinese Herbal Medicine Chromatographic Fingerprint Likeluation System (2012 Edition)” i wybrano chromatogram próbki testowej SX1 jako widmo referencyjne. Szerokość okna czasowego ustawiono na 0,10 min, a do wygenerowania widm nałożonych i widm referencyjnych zastosowano metodę mediany. W sumie zidentyfikowano 23 wspólne piki (patrz Rysunek 3). Podobieństwo między odciskami palców próbki Rehmannia glutinosa i próbką odniesienia wynosiło 0,904–0,950, co wskazuje, że próbki Rehmannia glutinosa z różnych obszarów produkcyjnych oraz próbki surowej Rehmannia glutinosa i gotowanej Rehmannia glutinosa były podobne i miały dobrą jakość konsystencji.
Tabela 4 Wyniki oznaczania zawartości 5 składników w nasieniu Rehmanniae/%


13. rehmannozyd D; 17. leonuride; 19. echinakozyd; 20. kastanozyd A; 21. akteozyd
Rycina 3 Nakładające się chromatogramy HPLC 6 partii Semen Rehmanniae (SX1-SX4, HN1, HN2) i odnośnik (R)
3 Dyskusja
3.1 Dobór warunków chromatograficznych
W tym badaniu zbadano cztery układy fazy ruchomej: acetonitryl-woda, acetonitryl-0,1% roztwór kwasu mrówkowego, metanol-woda i metanol-0,1% roztwór kwasu mrówkowego. Wyniki wykazały, że pięć składników dobrze oddzielało się w układzie acetonitrylowym; w porównaniu z układem fazy ruchomej acetonitryl-woda, piki rehmannia glutinosa i glikozydów serdecznika w fazie ruchomej acetonitrylu-0.1% roztworu kwasu mrówkowego były węższe i miały dobrą symetrię pików. Jednocześnie, ze względu na różną absorpcję ultrafioletu przez pięć składników, zawartość tych składników jest bardzo zróżnicowana. W celu dokładniejszego określenia zawartości każdego składnika i zapewnienia równomiernego rozłożenia intensywności absorpcji pięciu składników na tym samym chromatogramie, absorpcję w ultrafiolecieglikozyd rehmanniowy Danalizowano glikozyd serdeczny, echinakozyd, cistanchezyd A i werbaskozyd i wybrano oznaczanie przy zmiennej długości fali, tj. 0-24 min, pierwszy wydzielony glikozyd rehmanniowy oznaczono przy 203 nm i 24-40 min, oddzielony echinakozyd, cistanchezyd A i werbaskozyd oznaczono przy 330 nm. Ponadto w tym badaniu zbadano także wpływ ekstrakcji metanolu, 70% roztworu metanolu, 50% roztworu metanolu i 50% roztworu acetonitrylu jako rozpuszczalników do ekstrakcji. Wyniki wykazały, że 70% roztwór metanolu jako rozpuszczalnik ekstrakcyjny pozwala lepiej rozpuścić badane składniki, a wyekstrahowana próbka zawiera mniej zanieczyszczeń. Dlatego w tym badaniu jako rozpuszczalnik do ekstrakcji wybrano 70% metanol, a jako układ fazy ruchomej acetonitryl-0,1% roztwór kwasu mrówkowego i wykorzystano zmienną długość fali do określenia zawartości pięciu składników Rehmanni.

3.2 Analiza wyników oznaczania próbek
Z wyników oznaczeń wynika, że po gotowaniu na parze, poza nieznacznym wzrostem zawartości echinakozydu, znacząco obniżyła się zawartość pozostałych czterech składników, zwłaszcza leonuryzydu i cistanchezydu A; zawartość glikozydu rehmannia D i cistanchezydu A w Rehmannia glutinosa z tego samego obszaru produkcyjnego różniła się nieznacznie, a zawartość leonuryzydu, echinakozydu i werbaskozydu była istotnie różna; zawartość echinakozydu w Rehmannia glutinosa z obszaru produkcyjnego Henan była istotnie wyższa niż w próbkach z obszaru produkcyjnego Shanxi, a zawartość pozostałych czterech składników była nieco inna. Jednocześnie, zgodnie z odciskiem palca HPLC ustalonym w tym badaniu, podobieństwo między 6 partiami próbek Rehmannia a kontrolnym odciskiem palca wynosiło 0,904 ~ 0,950, co wskazuje, że główna substancja chemiczna składniki 6 partii próbek Rehmannia przed i po obróbce były wysoce spójne.
Podsumowując, metoda oznaczania zawartości i odcisk palca HPLC ustalone w tym badaniu są dokładne, niezawodne i mają dobrą specyficzność. Można je wykorzystać do scharakteryzowania zmian w składnikach i stopniu przetworzenia Rehmannia glutinosa przed i po przetworzeniu, a także zapewnić wsparcie techniczne przy kontroli jakości Rehmannia glutinosa. Jednakże wadą tego badania są małe partie próbek i niepełne pokrycie obszarów produkcyjnych, co wymaga dalszej analizy i weryfikacji.

Referencje
[1] Komitet Farmakopei Chińskiej. Farmakopea Chińskiej Republiki Ludowej: Tom 1 [S]. Pekin: China Medical Science and Technology Press, 2020: 129-130.
[2] Xu Jun, Fu Zhetong. Badania nad historyczną ewolucją nazw przetworzonej Rehmannia glutinosa i badanie jej skuteczności [J]. Chińska medycyna patentowa, 2017, 39 (9): 1913-1916.
[3] Zhu Jue, Zhu Xiangmei, Shi Yuhe i in. Postęp badań nad Rehmannia glutinosa i analiza predykcyjna jej markerów jakości [J]. Chińska medycyna patentowa, 2022, 45 (2): 1273-1281.
[4] Chen Jinpeng, Zhang Kexia, Liu Yi i in. Postęp badań nad składem chemicznym i działaniem farmakologicznym Rehmannia glutinosa [J]. Chińska medycyna ziołowa, 2022, 52 (6): 1772-1784.
[5] Li Hongwei, Meng Xiangle. Postęp badań nad składnikami chemicznymi i działaniem farmakologicznym Rehmannia glutinosa[J].
Badania nad oceną leków, 2015, 38(2): 218-228.
[6] Zhang Boyong, Jiang Zhenzuo, Wang Yuefei i in. Analiza składników chemicznych świeżej Rehmannia glutinosa, surowej Rehmannia glutinosa i gotowanej Rehmannia glutinosa metodą UPLC/ESI-Q-TOF MS[J]. Chińska medycyna patentowa, 2016, 38(5): 1104-1108.
[7] Zhang Lixian, Wei Yue, Li Feifei i in. Rozpoznawanie wzoru linii papilarnych i oznaczanie zawartości wieloskładnikowej w różnych przetworzonych produktach Rehmannia glutinosa[J]. Hubei Agricultural Sciences, 2023, 62(9): 135-141.
[8] Chen Jinpeng, Zhang Kexia, Liu Yi i in. Postęp badań nad składnikami chemicznymi i działaniem farmakologicznym Rehmannia glutinosa[J]. Chińska medycyna ziołowa, 2021, 52(6): 1772-1784.
[9] Tao Yi, Jiang Yanhui, Tang Kejian i in. Badanie porównawcze składników chemicznych Rehmannia glutinosa przed i po obróbce metodą UHPLC-Q-TOF/MS[J]. Nowe leki chińskie i farmakologia kliniczna, 2016, 27(1): 102-106.
[10] Xu Zhuo, Dai Xinxin, Su Shulan i in. Dynamiczna akumulacja składników nukleozydowych i aminokwasowych w Rehmannia glutinosa w oparciu o UPLC-TQ-MS[J]. Chińska medycyna ziołowa, 2021, 52(23): 7323-7330.
[11] Li Yujiao. Badanie technologii przetwarzania i mechanizmu „dziewięciu parowania i dziewięciu ekspozycji” Rehmannia glutinosa[D]. Jinan: Uniwersytet w Shandong, 2023.
[12] Wang Yue, Zhou Qiao, Zhang Xuelan i in. HPLC Jednoczesne oznaczanie zawartości ośmiu składników Rehmannia glutinosa i jej różnych produktów przetworzonych za pomocą analizy odcisków palców UPLC i wieloindeksowego oznaczania zawartości składników [J]. Chińskie materiały lecznicze, 2021, 44 (7): 64-68.
[13] Guo Xiaokai, Xue Shujuan, Chen Suiqing. Ocena jakości Rehmannia glutinosa na podstawie odcisku palca UPLC i wieloindeksowego oznaczania zawartości składników [J]. Chińskie materiały lecznicze, 2021, 44 (4): 917-923.






