Ulepszone działanie przeciwutleniające i przeciwutleniające polisacharydu z nasion Cuscuta Chinensis Lam po hydrolizie enzymatycznej

Mar 30, 2023

Abstrakcyjny

Polisacharyd Cuscuta chinensis (CPS) ekstrahowano gorącą wodą i enzymatycznie zhydrolizowany polisacharyd C. chinensis (ECPS) wytworzono w procesie enzymatycznej hydrolizy mannanazy. Celem pracy było zbadanie antymelanogennego działania ECPS i CPS w komórkach czerniaka B16F10. Aktywność przeciwutleniającą in vitro oceniano na podstawie ich mocy redukującej żelazo żelazowe i aktywności wychwytywania wolnych rodników DPPH. Rozkład masy cząsteczkowej polisacharydów określono stosując SEC-MALLS-RI. CPS z powodzeniem degradowano enzymatycznie przy użyciu mannozy, a średnie ważone masy cząsteczkowe CPS i ECPS wynosiły 434,6 kDa i 211,7 kDa. Wyniki testów aktywności biologicznej sugerowały, że enzymatycznie zhydrolizowany polisacharyd miał lepszą aktywność antymelanogenną i działanie przeciwutleniające niż oryginalny polisacharyd. ECPS wykazywał działanie przeciwmelanogenne poprzez regulację w dół ekspresji tyrozynazy, MITF i TRP-1 bez działania cytotoksycznego w komórkach czerniaka B16F10. Podsumowując, ECPS ma potencjał, aby stać się produktem wybielającym skórę. Według odpowiednich badań,cistanchejest pospolitym ziołem znanym jako „cudowne zioło przedłużające życie”. Jego głównym składnikiem jest cistanozyd, który ma różne działanie, takie jak przeciwutleniacz, działanie przeciwzapalne i promowanie funkcji odpornościowych. Mechanizm pomiędzycistancheIWybielanie skórypolega na działaniu przeciwutleniającym glikozydów cistanche.Melaninaw ludzkiej skórze powstaje w wyniku katalizowanego przez utlenianie tyrozynytyrozynaza, a reakcja utleniania wymaga udziału tlenu, więc wolne rodniki tlenowe w organizmie stają się ważnym czynnikiem wpływającym na produkcję melaniny. Cistanche zawiera cistanoside, który jest przeciwutleniaczem i może w ten sposób zmniejszać wytwarzanie wolnych rodników w organizmiehamowanie produkcji melaniny.

Słowa kluczowe:polisacharyd Cuscuta chinensis; Działanie antymelanogenne; Polisacharyd hydrolizy enzymatycznej; Aktywność antyoksydacyjna

Wstęp 

Melanina jest końcowym produktem przemiany L-tyrozyny, która jest głównym wyznacznikiem koloru włosów i skóry oraz odgrywa istotną rolę w ochronie przed uszkodzeniami spowodowanymi promieniowaniem ultrafioletowym (1). Jednak nagromadzenie melaniny może być zaangażowane w nieprawidłową pigmentację i skutkować przebarwieniami skóry, melasmą, melanozą słoneczną i nabłonkami (2). Biosynteza melaniny obejmuje sekwencję reakcji enzymatycznych i oksydacyjnych, a tyrozynaza odgrywa w tym procesie ważną rolę (3). Białko związane z tyrozynazą (TRP{6}}) ułatwia tworzenie oksydazy DHICA w szlaku biosyntezy melaniny (4). Wewnątrzkomórkowy czynnik transkrypcyjny związany z mikroftalmią (MITF) jest ważną transkrypcją

regulator genów biosyntezy melaniny. MITF bierze również udział w regulacji pigmentacji, proliferacji i różnicowania melanocytów (5). sygnalizacja receptora a-MSH-melanokortyny 1 występuje w specyficznych enzymach melanogennych, w tym TRP-1; tyrozynaza jest również regulowana przez MITF (5). Wiele środków wybielających skórę wywiera działanie antymelanogenne poprzez regulację ekspresji tyrozynazy lub działanie hamujące aktywność tyrozynazy. Ponadto wewnątrzkomórkowy poziom przeciwutleniaczy i produkcja wolnych rodników również wpływają na zawartość melaniny (6). Dlatego inhibitory tyrozynazy i związki przeciwutleniające są często wybierane jako środki wybielające skórę. Cuscuta chinensis Lam., zwana po chińsku TuSiZi, to tradycyjna chińska medycyna powszechnie stosowana jako żywność funkcjonalna i znana ze zwiększania zdolności układu rozrodczego (7). W ostatnich latach niektóre doniesienia wskazywały na jego zastosowanie w leczeniu piegów i bielactwa (8). Inne doniesienia wykazały, że wywiera pozytywny wpływ na ochronę skóry (9) oraz indukuje hamowanie aktywności tyrozynazy (10).

rou cong rong whitening

Kliknij na korzyści Rou Cong Rong dla wybielania

Zapytaj o więcej:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Polisacharydy są głównymi składnikami ekstraktu wodnego C. chinensis Lam. nasion, które uważa się za mające działanie antyapoptotyczne (11) i immunologiczne (12). Poprzednie wyniki analityczne wskazywały, że C. chinensis Lam. polisacharyd składa się z fruktozy, mannozy, ksylozy i arabinozy; mannoza jest głównym składnikiem cukru (13). Wielu badaczy wykazało, że lepkość (14), rozkład masy cząsteczkowej (Mw) (15) i udział monosacharydów (16) polisacharydów mają ogromny wpływ na ich bioaktywność. Co więcej, ostatnie badania wykazały, że zdegradowane polisacharydy o niskiej Mw wykazują wyższą aktywność przeciwutleniającą i hamującą tyrozynazę niż oryginalny polisacharyd (17). Zatem wytwarzanie polisacharydu o niskiej Mw z C. chinensis Lam. nasiona są niezbędne do poprawy jego bioaktywności. Wśród różnych procesów degradacji, główne zalety degradacji enzymatycznej to specyficzność substratowa, wysoka selektywność i łagodne warunki, które dają hydrolizaty o dobrze zdefiniowanej strukturze (18).

Na podstawie tych badań farmakologicznych spekulowaliśmy, że polisacharyd C. chinensis (CPS) i enzymatycznie hydrolizowany polisacharyd C. chinensis (ECPS) mogą być skutecznymi lekami botanicznymi poprawiającymi przebarwienia. Mannazę zastosowano do uzyskania ECPS o niskiej Mw z nasion. Ponadto oszacowano aktywność przeciwmelanogenną i przeciwutleniającą polisacharydów o różnych Mw oraz zbadano zależność między bioaktywnościami a Mw polisacharydów.

Materiał i metody

Odczynniki

Chemikalia do działania enzymów i przeciwutleniaczy zakupiono od Sigma Co. (USA). Wszystkie inne odczynniki i chemikalia zakupiono od firmy Aladdin (Chiny).

Przygotowanie CPS i ECPS

Materiały lecznicze nasion Cuscuta chinensis Lam zostały dostarczone przez firmę Guang Dong Feng Chun Pharmaceutical CO., LTD (Chiny). Około 500 g suchych materiałów sproszkowano i nasączono 1200 ml 80% etanolu przez 24 godziny w temperaturze pokojowej w celu usunięcia lipidów, oligosacharydów i kolorowych materiałów. Wstępnie potraktowane próbki infiltrowano szmatką, a następnie wysuszoną pozostałość trzykrotnie ekstrahowano 3000 ml wody w temperaturze 90 stopni. Wodne ekstrakty oddzielono od pozostałości przez odwirowanie (4000 g przez 5 min w 22 stopniach), a następnie zatężono w 70 stopniach pod zmniejszonym ciśnieniem; kondensat wytrącano 60% etanolem w 3 stopniach przez 24 godziny. Ostatecznie osad odbiałczono metodą Sevag, dializowano przez membranę 3500 Da, liofilizowano, a następnie znakowano polisacharydem C. chinensis (CPS).

Enzymatycznie zhydrolizowany polisacharyd C. chinensis (ECPS) otrzymano przez hydrolizę z mannozą (0,1 procent w buforze octanu sodu) w stosunku mannozy do substratu 5:1 (obj./wag.) w temperaturze 60 stopni, pH 4,5 przez 6 godz. Następnie reakcję katalizy zakończono we wrzącej wodzie na 10 minut. Roztwór reakcyjny wirowano przy 10, 000 g przez 15 minut (4 stopnie), a supernatant zbierano do dializy w temperaturze 3 stopni przez 3 dni z membraną 3500 Da w celu usunięcia substancji małocząsteczkowych i liofilizowano.

Zawartość węglowodanów oznaczano metodą fenolokwasu siarkowego z glukozą jako substancją wzorcową krzywej kalibracyjnej.

cistanche tubulosa

Pomiar SEC-MALLS-RI

Chromatografia wykluczania wielkości (Waters, USA) w połączeniu z wielokątowym laserowym detektorem rozpraszania światła (Wyatt, USA) i detektorem współczynnika załamania światła (Waters, USA) (SEC-MALLS-RI) została wykorzystana do wykrycia średnich ważonych mas cząsteczkowych polisacharydy. SEC-MALLS-RI przeprowadzono na kolumnie Phenomenex Polysep-GFC-Linear (8 mm x 3{{1{13}}}}0 mm); próbki (2 mg/ml) rozpuszczono w fazie ruchomej, która składała się z 0,1 M chlorku sodu. Objętość wstrzyknięcia wynosiła 100 ml, a kolegę ustawiono na 0,7 ml/min.

Test hamowania tyrozynazy grzybowej

Hamowanie tyrozynazy grzybowej (19) przeprowadzono zgodnie z wcześniejszymi doniesieniami z modyfikacjami. W skrócie, 25 ml kwasu kojowego (kontrola pozytywna) lub roztworów próbek (25 ml 10 mM L-tyrozyny, 25 ml 0,5 mM L-DOPA i 875 ml 50 mM roztwór buforu fosforanowego (pH 6,5)) zmieszano. Następnie dodano 38 ml 2100 U/ml tyrozynazy grzybowej i worteksowano. Po 0,5-h inkubacji w 37 stopniach zmierzono absorbancję za pomocą czytnika mikropłytek przy 475 nm (Thermo Fisher, USA). Procent hamowania aktywności tyrozynazy obliczono według następującego wzoru: procent hamowania tyrozynazy=[(A-kontrola – A-próbka) / A-kontrola] × 100, gdzie A-kontrola reprezentuje absorbancję przy 475 nm bez próbka i próbka A reprezentują absorbancję przy 475 nm z próbką.

Hodowla komórkowa i test żywotności

Mysie komórki czerniaka B16F10 zakupiono od firmy Biochemistry and Cell Biology (Chiny). Komórki utrzymywano w pożywce Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) uzupełnionej 10% płodową surowicą bydlęcą (FBS), 100 mg/ml streptomycyny i 100 IU/ml penicyliny w 37 stopniach w wilgotnych warunkach zawierających 5% CO2. Komórki wysiano na płytki hodowlane i uzupełniono różnymi stężeniami próbek i hormonem stymulującym melanocyty (a-MSH) przez 72 godziny w celu zmierzenia wewnątrzkomórkowej aktywności tyrozynazy i ilościowego określenia zawartości melaniny.

Test bromku 3-(4,5-dimetylotiazol-2-ilo)-2,{5}}difenylotetrazoliowego (MTT) przeprowadzono w celu zbadania żywotności komórek (20). Pokrótce, 96-dołkowe płytki wysiano mysimi komórkami czerniaka B16F10. Objętość 50 µl 2 mg/ml MTT przeniesiono do każdej studzienki po potraktowaniu 100 µl różnych stężeń próbek przez 24 godziny. Po 4-h inkubacji reakcję zakończono i dodano sulfotlenek dimetylu w celu rozpuszczenia nierozpuszczalnego produktu. Absorbancję mierzono przy 590 nm za pomocą czytnika mikropłytek.

Pomiar zawartości melaniny

Oznaczenie zawartości melaniny przeprowadzono nieco zmodyfikowaną metodą (21). Po przemyciu lodowatym PBS, komórki czerniaka (2 x 104 komórek na studzienkę) wysiano na 96- płytce studzienkowej i inkubowano w temperaturze 37 stopni przez 48 godzin. Następnie do każdej studzienki dodano 100 ml NaOH (1N) w celu rozpuszczenia komórek czerniaka w temperaturze 80 stopni przez 30 minut. Lizat wirowano przy 15, 000 g przez 15 minut (4 stopnie). Następnie zmierzono absorbancję za pomocą czytnika mikropłytek przy 405 nm. Wszystkie doświadczenia przeprowadzono w trzech powtórzeniach.

Test wewnątrzkomórkowej aktywności tyrozynazy

Test wewnątrzkomórkowej aktywności tyrozynazy przeprowadzono zgodnie z wcześniejszą literaturą z niewielkimi modyfikacjami (22). Pokrótce, komórki czerniaka poddano lizie buforem do lizy (1 mM PMSF, 1 procent Triton X{3}}, 2 0 mM fosforan sodu) przez zamrażanie-rozmrażanie. Po odwirowaniu lizatu przy 15,{7}} g przez 1 0 min (4 stopnie), zawartość białka w supernatancie określono za pomocą oznaczenia kwasu bicynchoninowego (BCA). Białko znad osadu (10 mg) przeniesiono do 100 ml mieszaniny reakcyjnej (0,1% L-DOPA i 0,1 M bufor fosforanowy). Po 60 min inkubacji w temperaturze 37°C zmierzono aktywność tyrozynazy za pomocą czytnika mikropłytek przy 450 nm. Wszystkie doświadczenia przeprowadzono w trzech powtórzeniach.

Żelazo żelazowe zmniejsza moc

Test mocy redukującej żelazo żelazowe przeprowadzono zgodnie z wcześniej opublikowaną metodą z niewielkimi modyfikacjami (23). Różne stężenia próbek (2 ml) lub Vc (kontrola pozytywna) zmieszano z 2 ml żelazicyjanku potasu (1 procent, W/V) i 2 ml buforu fosforanowego (0,2 M, pH 6,8). Po inkubacji w 5 {19}} stopniach przez 3 0 min, 2 ml kwasu trichlorooctowego (10 procent, wag./obj.) przeniesiono do mieszaniny reakcyjnej i wirowano przy 4000 g przez 15 min (22 stopnie). Supernatant (2 ml) zmieszano z mieszaniną zawierającą 2 ml wody destylowanej i 0,4 ml FeCl3 (0,1 procent, wag./obj.). Po 10 minutach inkubacji w temperaturze 37°C zmierzono absorbancję czytnikiem mikropłytek przy 700 nm.

Test aktywności wychwytywania rodników DPPH

Test aktywności wychwytywania DPPH przeprowadzono zgodnie z wcześniejszymi doniesieniami z pewnymi modyfikacjami (24). Pokrótce, 2 ml próbki dodano do 2 ml 0,1 mM roztworu DPPH i worteksowano. Po 30 minutach inkubacji w ciemności zmierzono absorbancję czytnikiem mikropłytek przy 517 nm.

Analiza ekspresji białka metodą Western blot

cistanche supplement whitening

Po traktowaniu różnymi stężeniami ECPS przez 72 godziny, komórki przemyto PBS i poddano lizie w buforze RIPA (150 mM NaCl w 50 mM pH 8.0 Tris-HCl , 0,5% dezoksycholanu sodu, 1,0% nondiet P-40 i 0,1% dodecylosiarczanu sodu). Po odwirowaniu w 10,000 g przez 25 min (4 stopnie), zebrano supernatant lizatów. Białka poddano 12% SDS-PAGE, a następnie przeniesiono na membranę z polifluorku winylidenu. Blokowanie przeprowadzono w soli fizjologicznej buforowanej Tris z Tween{20}} i 2% odtłuszczonym mlekiem w proszku (TBST), a następnie inkubowano przez 12 godzin w 4 stopniach. Zastosowanymi przeciwciałami pierwotnymi były: anty-aktyna (1:5000), anty-TRP{28}} (1:500), anty-tyrozynaza (1:500) i anty-MITF (1:1000). Pierwszorzędowe przeciwciała usunięto, a membrany dwukrotnie przemyto TBST. Następnie błony z drugorzędowym przeciwciałem skoniugowanym z peroksydazą chrzanową (Santa Cruz, USA) inkubowano przez 60 minut w temperaturze pokojowej. Prążki białkowe ponownie przemyto TBST i wizualizowano za pomocą zestawu ECL (Amersham Pharmacia Biotech, USA) przy użyciu systemu obrazowania UVP (UVP, USA).

Analiza statystyczna

Wszystkie wyniki podano jako średnie ± SD, a eksperymenty powtórzono trzykrotnie. Porównania między grupami oszacowano za pomocą ANOVA, a następnie testu Dunnetta. Pojedynczych porównań między dwiema grupami dokonano za pomocą testu t-Studenta. Wszystkie analizy statystyczne wykonano przy użyciu oprogramowania SPSS (wersja 16.{2}}). Po{3}},05 zwykle uznawano za statystycznie istotne.

Wyniki

Mw i suma polisacharydów ECPS i CPS

Całkowita zawartość polisacharydów w ECPS i CPS mierzona w teście fenolo-kwas siarkowy wynosiła odpowiednio 89,17 i 90,26%. Tymczasem Mw ECPS i CPS mierzono za pomocą SEC-MALLS-RI. Mw ECPS wynosiła 211,7 kDa, czyli mniej niż CPS (434,6 kDa). Figura 1A przedstawia względną intensywność (RI) dla ECPS i CPS; po hydrolizie enzymatycznej przez mannozę, czas retencji piku dla ECPS był dłuższy niż dla CPS. Jak pokazano na fig. 1B, różne frakcje wagowe polisacharydów przedstawiono jako funkcję masy molowej próbek. Rozkład masy molowej polisacharydów zmienił się znacząco w wyniku hydrolizy enzymatycznej. Zróżnicowana frakcja wagowa ECPS w regionie o niskiej Mw wzrosła, co sugerowało, że CPS został enzymatycznie zdegradowany do polisacharydu o niskiej Mw.

rou cong rong benefits

Działanie przeciwutleniające polisacharydów

Zdolność ECPS i CPS do wychwytywania wolnych rodników przez DPPH przedstawiono na rycinie 2A. Aktywność zmiatania wolnych rodników próbek polisacharydów i Vc wykazywała aktywność zależną od dawki. W obecnym badaniu zdolność CPS do usuwania wolnych rodników była niższa niż ECPS. Jednak obie wykazywały mniejszy efekt wychwytywania wolnych rodników niż próbka dodatnia. Wartości IC50 ECPS i CPS wynosiły odpowiednio 0,39 i 0,51 mg/ml. Jak pokazano na rycinie 2B, całkowitą aktywność przeciwutleniającą można ocenić, badając zdolność redukującą żelazo żelazowe. Stężenia wahały się od 0,1 do 1 mg/ml; zarówno próbki polisacharydu, jak i Vc wykazywały aktywność przeciwutleniającą w sposób zależny od dawki. Ponadto wartość absorbancji ECPS była zawsze wyższa niż CPS przy tym samym stężeniu.

Wpływ ECPS i CPS na aktywność tyrozynazy grzybów i żywotność komórek

Jak pokazano na fig. 2C, hamująca tyrozynazę aktywność polisacharydów (0.1B1 mg/ml) przedstawia zależność zależną od dawki. Co więcej, efekt hamujący ECPS był zawsze wyższy niż CPS przy tym samym stężeniu. Test MTT przeprowadzono w celu oceny efektów cytotoksycznych ECPS i CPS w komórkach czerniaka B16F10. Jak pokazano na Figurze 2D, nie było znaczących zmian w żywotności komórek B16F10 przy różnych stężeniach (0B320 mg/ml) ECPS i CPS. Na podstawie tych wyników zastosowaliśmy te zakresy stężeń w

dalsze badania.

cistanche for sale

Wpływ ECPS i CPS na aktywność tyrozynazy wewnątrzkomórkowej i zawartość melaniny

Aby porównać wpływ ECPS i CPS na aktywność wewnątrzkomórkowej tyrozynazy i melanogenezy w modelu komórek czerniaka B16F1{11}}, siłę hamowania ECPS i CPS na zawartość melaniny i aktywność tyrozynazy w stymulowanym a-MSH B16F1{{ Zbadano 16}} komórek. Jak pokazano na rycinie 3, zawartość melaniny i aktywność tyrozynazy w komórkach B16F10 były znacząco zwiększone w porównaniu z niestymulowanymi komórkami B16F10 (Po 0,01). Przy stężeniach 40 mg/ml (ECPS) i 160 mg/ml (CPS) wzrost zawartości melaniny można było złagodzić w sposób zależny od dawki (Po0,01 i Po0,05). Podobnie traktowanie ECPS (40 mg/ml) i CPS (160 mg/ml) hamowało aktywność tyrozynazy komórek B16F10 (Po 0,01 i Po 0,05). Ponadto ECPS wykazywał wyższą aktywność hamującą tyrozynazę w melanogenezie niż CPS. ECPS (160 i 320 mg/ml) wywarł efekt przeciw melanogenezie porównywalny z kontrolą pozytywną (kwas kojowy), który jest szeroko stosowany jako związek bioaktywny wybielający skórę.

how to take rou cong rong

Wpływ ECPS na poziom tyrozynazy, MITF i białka TRP-1 w komórkach B16F10

Jak pokazano na rycinie 4, ECPS znacznie obniżył poziomy ekspresji białek tyrozynazy, MITF i TRP-1 w komórkach B16F10 w sposób zależny od dawki (Po0.05 i Po0. 01). Wyniki te pokazują, że ECPS hamował ekspresję tyrozynazy poprzez regulację w dół ekspresji białka TRP-1 i MITF.

Dyskusja

Naturalnym polisacharydom z C. chinensis zwrócono uwagę ze względu na ich dobry wpływ na hamowanie tyrozynazy, wychwytywanie wolnych rodników i ochronę skóry (25-27). Jednak niewiele badań koncentrowało się na aktywności antymelanogenezy enzymatycznej modyfikacji polisacharydów. Wcześniejsze badania wykazały, że polisacharydy zdegradowane w procesie hydrolizy enzymatycznej wykazywały lepsze działanie wychwytujące wolne rodniki (28). Ponadto aktywność biologiczna polisacharydów jest ściśle związana z ich rozkładem Mw. Teoretycznie polisacharydy o niskiej Mw są bardziej aktywne niż polisacharydy o wysokiej Mw ze względu na ich wysoką zdolność penetracji błon komórkowych (29,30). Jednak efekt antymelanogenezy ECPS na komórki B16F10 nie był jeszcze badany. Polisacharyd o niskiej Mw wytworzono przez hydrolizę enzymatyczną mannozą.

Stres oksydacyjny może wytwarzać nadmierne ilości wolnych rodników i prowadzić do uszkodzeń oksydacyjnych. Wcześniejsze badania dowiodły, że choroby skóry są ściśle związane z gromadzeniem się wolnych rodników (31). Ponadto nadmiar wolnych rodników odgrywa istotną rolę w hamowaniu melanogenezy komórek czerniaka i wzrostu melanocytów (32). Tyrozynaza jest wielofunkcyjnym enzymem utleniającym, który zawiera brąz i jest niezbędny do promowania biosyntezy melaniny (33). Jednak pigmentacja skóry i różne choroby skóry są ściśle związane z gromadzeniem się melaniny i powodują poważny problem estetyczny (34).

Składniki aktywne o właściwościach przeciwutleniających i antytyrozynazowych mogą działać ochronnie na skórę i hamować melanogenezę (35). Nasze wyniki wykazały, że niższe Mw enzymatycznie modyfikowanych polisacharydów wykazywały lepszą aktywność przeciwutleniającą i przeciw tyrozynazie niż oryginalne polisacharydy in vitro. Poprawę przypisuje się większej powierzchni i lepszej rozpuszczalności w wodzie, co było zgodne z wcześniejszym badaniem (17), które wykazało, że zdegradowany polisacharyd z Sargassum wrzecionowaty ma lepszą aktywność przeciw tyrozynazie i aktywność przeciwutleniającą niż oryginalny polisacharyd.

cistanche reddit whitening

Normalne melanocyty leżą na styku naskórka i skóry właściwej skóry i wytwarzają melaninę, która jest przenoszona do keratynocytów (36). W niniejszym badaniu wykorzystano mysie komórki czerniaka B16F10, ponieważ posiadają mechanizmy melanogenne, wiadomo, że mają wewnątrzkomórkową tyrozynazę i mogą wytwarzać melaninę, która jest związana ze stymulacją a-MSH i melanogenezą (37). Aktywność tyrozynazy, zawartość melaniny i żywotność komórek były testami in vitro stosowanymi do badań przesiewowych antytimelanogenezy w niniejszym badaniu. CPS i ECPS wykazywały zależne od dawki działanie hamujące aktywność tyrozynazy i syntezę melaniny w komórkach B16F10. ECPS wykazał silniejszą syntezę antymelaniny i działanie antytyrozynazowe.
Białko związane z tyrozynazą -1 (TRP{2}}) i tyrozynaza odgrywają istotną rolę w szlakach biosyntezy i melanogenezy melaniny (38). MITF jest komórkowym czynnikiem transkrypcyjnym genu tyrozynazy, który bierze udział w melanogenezie. Zwykle aktywacja TRP{4}} i tyrozynazy nasila ekspresję białka MITF i powoduje wzrost syntezy melaniny (39). Zatem środki wybielające skórę mogą mieć właściwość hamowania szlaku sygnałowego zaangażowanego w aktywację TYP -1 lub tyrozynazy. Dlatego zbadaliśmy wpływ ECPS na ekspresję białek TRP-1, tyrozynazy komórkowej i MITF, aby zbadać mechanizmy leżące u podstaw hamowania aktywności tyrozynazy i melanogenezy. Wyniki testu Western blot wykazały, że ECPS tłumił ekspresję TRP-1, tyrozynazy i MITF w komórkach B16F10 i sugerował, że ECPS zmniejszał melanogenezę poprzez obniżanie ekspresji tyrozynazy, MITF i TRP{12}} w komórkach czerniaka B16F10. Wynik pochodzi z poprzedniego badania pokazującego, że wodny ekstrakt z nasion Cuscuta japonica znacząco hamował indukowaną przez a-MSH syntezę melaniny i aktywność tyrozynazy poprzez hamowanie fosforylacji p38 MAPK, hamowanie poziomów cAMP, a następnie zmniejszanie ekspresji TRP i MITF (40) .
Podsumowując, enzymatycznie modyfikowany polisacharyd miał lepsze działanie przeciwutleniające i antymelanogenne niż oryginalny polisacharyd. Ponadto w tym antymelanogennym działaniu ECPS pośredniczy tłumienie ekspresji TRP{2}}, tyrozynazy i MITF w mysich komórkach B16F10. ECPS może mieć zastosowanie w dziedzinie produktów kosmetycznych i medycznych.

Podziękowanie

Ta praca była wspierana przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (grant nr 81373640).

Bibliografia

1. Riley PA. Melanogeneza i czerniak. Badanie Komórek Pigmentowych 2003; 16: 548–552, doi: 10.1034/j. 1600-0749. 2003.00069.x.
2. Ortonne JP, Bissett DL. Najnowsze informacje na temat hiperpigmentacji skóry. J Investig Dermatol Symp Proc 2008; 13: 10–14, doi: 10.1038/jidsymp.2008.7.
3. Arung ET, Kuspradini H, Kusuma IW, Shimizu K, Kondo R. Walidacja liści Eupatorium triplinerve Vahl, zioła do pielęgnacji skóry ze wschodniego Kalimantanu, przy użyciu testu biosyntezy melaniny. J Acupunct Meridian Stud 2012; 5: 87–92, doi: 10.1016/j.jams.2012.01.003.
4. Kobayashi T, Urabe K, Winder A, Jiménez-Cervantes C, Imokawa G, Brewington T i in. Białko 1 związane z tyrozynazą (TRP1) działa jako oksydaza DHICA w biosyntezie melaniny. EMBO J 1994; 13: 5818–5825.
5. Costin GE, przesłuchujący VJ. Pigmentacja ludzkiej skóry: melanocyty modulują kolor skóry w odpowiedzi na stres. FASEB J 2007; 21: 976–994, doi: 10.1096/fj.06-6649rew.
6. Galván I, Alonso-Alvarez C. Wewnątrzkomórkowy przeciwutleniacz określa ekspresję sygnału opartego na melaninie u ptaka. PLoS One 2008; 3: e3335, doi: 10.1371/journal.pone. 0003335.
7. Yang J, Wang Y, Bao Y, Guo J. Całkowite flawonoidy z nasienia auscultate odwracają obniżenie poziomu testosteronu i ekspresję genu receptora androgenowego u myszy z niedoborem yang nerek. J Ethnopharmacol 2008; 119: 166–171, doi: 10.1016/j.jep.2008.06.027.
8. Donnapee S, Li J, Yang X, Ge AH, Donkor PO, Gao XM i in. Cuscuta chinensis Lam.: Systematyczny przegląd etnofarmakologii, fitochemii i farmakologii ważnej tradycyjnej medycyny ziołowej. J Etnofarmakol 2014; 157: 292–308, doi: 10.1016/j.jep.2014.09.032.
9. Nisa M, Akbar S, Tariq M, Hussain Z. Wpływ ekstraktu wodnego Cuscuta chinensis na brodawczaki i raki skóry wywołane 7,12-dimetylobenz[a]antracenem u myszy. J Ethnophar macol 1986; 18: 21–31, doi: 10.1016/0378-8741(86)90040-1.
10. Wang TJ, An J, Chen XH, Deng QD, Yang L. Ocena wpływu nasion Cuscuta chinensis na melanogenezę: Porównanie frakcji wody i etanolu in vitro i in vivo. J Etnofarmakol 2014; 154: 240–248, doi: 10.1016/j.jep. 2014.04.016.
11. Sun SL, Guo L, Ren YC, Wang B, Li RH, Qi YS i in. Działanie antyapoptotyczne polisacharydu wyizolowanego z nasion Cuscuta chinensis Lam na kardiomiocyty u starzejących się szczurów. Przedstawiciel Mol Biol 2014; 41: 6117–6124, doi: 10,1007/s11033- 014-3490-1.
12. Wang Z, Fang JN, Ge DL, Li XY. Charakterystyka chemiczna i aktywność immunologiczna kwaśnego polisacharydu wyizolowanego z nasion Cuscuta chinensis Lam. Acta Pharmacol Sin 2000; 21: 1136-1140.
13. Yang S, Xu X, Xu H, Xu S, Lin Q, Jia Z i in. Oczyszczanie, charakteryzacja i efekt biologiczny odwrócenia niedoboru nerki-yang polisacharydów z nasienia mięśniowego. Polim Węglowodorowy 2017; 175: 249–256, doi: 10.1016/j.carbpol. 2017.07.077.
14. Katayama S, Nishio T, Nishimura H, Saeki H. Właściwości immunomodulujące wysoce lepkiego ekstraktu polisacharydowego z algi Gagome (Kjellmaniella crassifolia). Pokarm roślinny Human Nutr 2012; 67: 76–81, doi: 10,1007/s11130-011- 0271-z.
15. Pengzhan Y, Ning L, Xiguang L, Gefei Z, Quanbin Z, Pengcheng L. Antyhiperlipidemiczne działanie siarczanowanych polisacharydów o różnej masie cząsteczkowej z Ulva pertusa (Chlorophyta). Pharmacol Res 2003; 48: 543–549, doi: 10.1016/ S1043-6618(03)00215-9.
16. Jiang Y, Qi X, Gao K, Liu W, Li N, Cheng N i in. Związek między masą cząsteczkową, składem monosacharydów i aktywnością immunobiologiczną polisacharydów Astragalus. Glycoconj J 2016; 33: 755–761, doi: 10,1007/s10719-016-9669-z.
17. Chen BJ, Shi MJ, Cui S, Hao SX, Hider RC, Zhou T. Poprawiona aktywność przeciwutleniająca i antytyrozynaza polisacharydu z Sargassum wrzecionowaty poprzez degradację. Int J Biol Macromol 2016; 92: 715–722, doi: 10.1016/j.ijbiomac. 2016.07.082.
18. McCleary BV. Enzymatyczna modyfikacja polisacharydów roślinnych. Int J Biol Macromol 19 86; 8: 349–354, doi: 10.1016/ 0141-8130(86)90054-1.
19. Baurin N, Arnoult E, Scior T, Do QT, Bernard P. Wstępne badanie przesiewowe niektórych roślin tropikalnych pod kątem aktywności antytyrozynazy. J Ethnopharmacol 2002; 82: 155–158, doi: 10.1016/S0378- 8741(02)00174-5.
20. Mosmann T. Szybki test kolorymetryczny wzrostu i przeżycia komórek: zastosowanie do testów proliferacji i cytotoksyczności. J Immunol Methods 1983; 65: 55–63, doi: 10.1016/0022- 1759(83)90303-4.
21. Hosoi J, Abe E, Suda T, Kuroki T. Regulacja syntezy melaniny w mysich komórkach czerniaka B16 przez 1 alfa, 25- dihydroksywitaminę D3 i kwas retinowy. Rak Res 1985; 45: 1474-1478.
22. Wang HM, Chen CY, Wen ZH. Identyfikacja inhibitorów melanogenezy z Cinnamomum subavenium za pomocą systemów przesiewowych in vitro i in vivo poprzez celowanie w ludzką tyrozynazę. Exp Dermatol 2011; 20: 242–248, doi: 10.1111/j. 1600-0625. 2010.01161.x.

23. Berker KI, Güc ¸lü K, Tor I˙, Apak R. Porównawcza ocena testów zdolności przeciwutleniających opartych na mocy redukującej Fe (III) w obecności fenantroliny, bat-ho-fenantroliny, tripyridyltriazine (FRAP) i żelazicyjanku odczynniki. Talanta 2007; 72: 1157-1165, doi: 10.1016/j.talanta.2007.01.019.

24. Parejo I, Codina C, Petrakis C, Kefalas P. Ocena działania wychwytującego oceniana przez chemiluminescencję luminolu indukowaną Co(II)/EDTA i DPPH ● (2,2-difenylo-1 pikrylohydroksyl ) test wolnorodnikowy. J Pharmacol Toxicol Methods 2000; 44: 507–512, doi: 10.1016/S1056-8719(01)00110-1.

25. Rout S, Banerjee R. Zmiatanie wolnych rodników, właściwości antyglikacyjne i hamujące tyrozynazę frakcji polisacharydowej wyizolowanej ze skórki Punica granatum. Biosurowiec
Techno 2007; 98: 3159–3163, doi: 10.1016/j.biortech.2006. 10.011.
26. Yu P i Sun H. Oczyszczanie fukoidanu z polisacharydu wodorostów i jego kinetyki hamowania tyrozynazy. Polimery Węglowodanowe 2014; 99: 278-283, doi: 10.1016/j.carbpol.2013.08.033.
27. Wei X, Liu Y, Xiao J, Wang Y. Ochronne działanie polisacharydów i polifenoli herbaty na skórę. J Rolnicza Chem Spożywczy 2009; 57: 7757–7762, doi: 10.1021/jf901340f.
28. Xu J, Xu LL, Zhou QW, Hao SX, Zhou T, Xie HJ. Zwiększona aktywność przeciwutleniająca in vitro polisacharydów z Enteromorpha prolifera poprzez degradację enzymatyczną. J Food Biochem 2016; 40: 275–283, doi: 10.1111/jfbc.12218.
29. Zhou J, Hu N, Wu Yl, Pan Yj, Sun CR. Wstępne badania charakterystyki chemicznej i właściwości przeciwutleniających kwaśnych polisacharydów z Sargassum fusiforme. J Zhejiang Univ Sci B 2008; 9: 721–727, doi: 10.1631/jus. B0820025.
30. Wu Q, Zheng C, Ning ZX, Yang B. Modyfikacja niskocząsteczkowych polisacharydów z Tremella fuciformis i ich aktywność przeciwutleniająca in vitro. Int J Mol Sci 2007; 8: 670–679, doi 10.3390/i8070670.
31. Yasui H, Sakurai H. Zależne od wieku wytwarzanie reaktywnych form tlenu w skórze żywych bezwłosych szczurów wystawionych na działanie światła UVA. Exp Dermatol 2003; 12: 655–661, doi: 10.1034/j.1600-0625.2003.00033.x.
32. Yamakoshi J, Otsuka F, Sano A, Tokutake S, Saito M, Kikuchi M i in. Wpływ rozjaśniający na pigmentację skóry świnki morskiej wywołaną promieniowaniem ultrafioletowym przez doustne podawanie ekstraktu bogatego w proantocyjanidynę z pestek winogron. Pigment Cell Res 2003; 16: 629–638, doi: 10.1046/j.1600-0749. 2003.00093.x.
33. Strothkamp KG, Jolley RL, Mason HS. Czwartorzędowa struktura tyrozynazy grzybowej. Biochem Biophys Res Commun 1976; 70: 519–524, doi 10.1016/0006-291X(76)91077-9.
34. Parvez S, Kang M, Chung HS, Bae H. Naturalnie występujące inhibitory tyrozynazy: mechanizm i zastosowania w przemyśle zdrowotnym skóry, kosmetykach i rolnictwie. Phytother Res 2007; 21: 805–816, doi: 10.1002/ptr.2184.

35. Perluigi M, De Marco F, Foppoli C, Coccia R, Blarzino C, Luisa Marcante M, et al. Tyrozynaza chroni ludzkie melanocyty przed związkami generującymi ROS. Biochem Biophys Res Commun 2003; 305: 250–256, doi: 10.1016/S0006- 291X(03)00751-4.

36. Hirobe T. Jak regulowana jest proliferacja i różnicowanie melanocytów? Pigment Cell Melanoma Res 2011; 24: 462–478, doi: 10.1111/j.1755-148X.2011.00845.x.
37. Buscà R, Ballotti R. Cyclic AMP jako kluczowy posłaniec w regulacji pigmentacji skóry. Pigment Cell Res 2000; 13: 60–69, doi: 10.1034/j.1600-0749.2000.130203.x.
38. Słominski A, Tobin DJ, Shibahara S, Wortsman J. Pigmentacja melaniny w skórze ssaków i jej regulacja hormonalna. Physiol Rev 2004; 84: 1155–1228, doi: 10.1152/physrev. 00044.2003.
39. Shibahara S, Yasumoto KI, Amae S, Udono T, Watanabe KI, Saito H i in. Regulacja ekspresji genów specyficznych dla komórek barwnikowych przez MITF. Pigment Cell Res 2000; 13: 98-102, doi: 10.1034/j.1600-0749.13.s8.18.x.
40. Jang JY, Kim HN, Kim YR, Choi YH, Kim BW, Shin HK i in. Wodna frakcja z nasion Cuscuta japonica hamuje syntezę melaniny poprzez hamowanie szlaku sygnałowego kinazy białkowej aktywowanej mitogenem p38 w komórkach B16F10. J Etnofarmakol 2012; 141: 338–344, doi: 10.1016/j.jep. 2012.02.043.
Może ci się spodobać również