Lipoamid łagodzi reakcję zapalną żywiciela wywołaną przez utleniony olej rybi i uszkodzenia oksydacyjne w jajowodzie kur niosek, część 2
Jul 28, 2023
Glikozyd cistanche może również zwiększać aktywność SOD w tkankach serca i wątroby oraz znacznie zmniejszać zawartość lipofuscyny i MDA w każdej tkance, skutecznie wymiatając różne reaktywne rodniki tlenowe (OH-, H₂O₂, itp.) i chroniąc przed uszkodzeniem DNA spowodowanym przez rodniki OH. Glikozydy fenyloetanoidowe Cistanche mają silne zdolności wymiatania wolnych rodników, wyższą zdolność redukującą niż witamina C, poprawiają aktywność SOD w zawiesinie plemników, zmniejszają zawartość MDA oraz mają pewien wpływ ochronny na funkcję błony plemników. Polisacharydy Cistanche mogą zwiększać aktywność SOD i GSH-Px w erytrocytach i tkankach płuc eksperymentalnie starzejących się myszy wywołaną przez D-galaktozę, a także zmniejszać zawartość MDA i kolagenu w płucach i osoczu oraz zwiększać zawartość elastyny, mają dobry efekt zmiatania DPPH, przedłuża czas niedotlenienia u starzejących się myszy, poprawia aktywność SOD w surowicy i opóźnia fizjologiczną degenerację płuc u doświadczalnie starzejących się myszy Eksperymenty z degeneracją morfologiczną komórek wykazały, że Cistanche ma dobrą zdolność przeciwutleniającą i ma potencjał, aby być lekiem do zapobiegania i leczenia chorób związanych ze starzeniem się skóry. Jednocześnie echinakozyd w Cistanche ma znaczną zdolność wychwytywania wolnych rodników DPPH i ma zdolność wychwytywania reaktywnych form tlenu i zapobiegania degradacji kolagenu wywołanej przez wolne rodniki, a także ma dobry wpływ naprawczy na uszkodzenia anionowe wolnych rodników tyminy.
Kliknij na maca ginseng cistanche
【Więcej informacji:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】
Powszechnie wiadomo, że układ odpornościowy to wielopłaszczyznowa i złożona sieć, która chroni gospodarza przed agresją. Odpowiedź zapalna jest istotnym składnikiem odpowiedzi wrodzonego układu odpornościowego na różne wyzwania (39). Ponadto odpowiedź zapalna jest jedną z bezpośrednich odpowiedzi wywołanych stresem oksydacyjnym (40, 41). Coraz więcej dowodów sugeruje, że ciągły stres oksydacyjny prowadzi do przewlekłego stanu zapalnego, który jest jedną z głównych przyczyn chorób przewlekłych (42). Badanie wykazało, że jako koenzym mitochondriów LA może złagodzić utratę funkcji mitochondriów z powodu starzenia się i zmniejszyć stres oksydacyjny i reakcję zapalną jajnika i jajowodu (43), poprawiając w ten sposób szlak reprodukcyjny. Zhou i in. (44) stwierdzili, że dodatek przeciwutleniaczy poprawił wydajność, prawdopodobnie poprzez zwiększenie odporności i złagodzenie stanu zapalnego kur niosek. W tym badaniu stwierdzono, że OFO indukowało wzrost czynników zapalnych w surowicy, a dodatek LAM do diety znacząco zwiększał poziomy immunoglobulin (IgA, IgG i IgM) i zmniejszał czynniki zapalne (TNF-, IL {{7} }, IL-6 i IFN-). Jako pochodna LA, wyniki te sugerują, że LAM może również poprawiać wydajność produkcji jaj poprzez łagodzenie stresu oksydacyjnego i odpowiedzi zapalnej.
Co więcej, kilka badań wykazało, że tempo składania jaj w późnym okresie składania jaj ma dodatnią korelację z poziomem estrogenu w surowicy (1, 45). Li i in. (46) stwierdzili, że wydajność produkcji jaj została poprawiona przez suplementy diety z saponiną sojową poprzez zwiększenie poziomu estrogenu w surowicy. Stwierdzono, że dodanie przeciwutleniaczy do diety może w pewnym stopniu poprawić produkcję jaj poprzez poprawę wydzielania estrogenów. Ostatnie badania wykazały, że LA może poprawić wydzielanie estrogenu u szczurów spowodowane menopauzą jajników (47) i uszkodzeniem oksydacyjnym (48). W niniejszym badaniu suplementacja LAM u starych kur niosek znacząco zwiększyła poziom E2 i P w surowicy. Zarówno E2, jak i P są głównymi estrogenami wytwarzanymi przez jajniki, które sprzyjają rozwojowi układu rozrodczego i poprawiają płodność u ludzi i zwierząt. Dlatego wydaje się prawdopodobne, że LAM może również poprawić tempo produkcji jaj poprzez zwiększenie wydzielania E2 i P.
Ilość wydzielanego estrogenu jest związana z rozwojem i dojrzewaniem pęcherzyka. Poza tym dobrze wiadomo, że szybkość składania jaj przez kury zależy głównie od formowania się pęcherzyków i procesu owulacji (31), liczba pęcherzyków często odzwierciedla produkcję jaj. W porównawczej analizie transkryptomicznej jajników kaczek o różnym tempie składania jaj zidentyfikowano 25 różnicujących genów związanych z rozwojem pęcherzyków. Te zróżnicowane geny były zaangażowane w wiele szlaków sygnałowych związanych z estrogenami (49). Uważa się, że stres oksydacyjny jest głównym czynnikiem rozwoju pęcherzyków. Stres oksydacyjny może wywołać apoptozę większości komórek rozrodczych, a nawet pęcherzyków w jajniku, a jego obecność w płynie pęcherzykowym obniża jakość pęcherzyków i zmniejsza wyniki reprodukcyjne. Z drugiej strony przeciwutleniacze zmniejszały poziom ROS i zapobiegały apoptozie komórek rozrodczych, w której pośredniczy stres oksydacyjny, zmniejszając w ten sposób wyczerpanie pęcherzyków (50). Kilka eksperymentów in vitro wykazało, że pewne stężenia LA mogą sprzyjać rozwojowi i dojrzewaniu pęcherzyka przedantralnego, takiego jak myszy i konie (51, 52). Nasze odkrycie wykazało, że OFO zmniejszyło liczbę dominujących pęcherzyków, podczas gdy dodanie LAM do diety złagodziło niekorzystny wpływ OFO na pęcherzyki. Dlatego LAM może oprzeć się wpływowi stresu oksydacyjnego na mieszki włosowe i poprawić produkcję jaj.
Podsumowując, badanie to dostarczyło dowodów na to, że OFO indukuje stan zapalny i uszkodzenie oksydacyjne jajowodu u kur niosek, wpływając w ten sposób niekorzystnie na wydajność produkcji jaj. Podczas gdy dodanie LAM do diety zwiększyło tempo składania jaj przez kury w późnym okresie nieśności poprzez zwiększenie zdolności antyoksydacyjnej jajowodu, odporności surowicy, poziomu estrogenu i zdolności antyoksydacyjnej oraz kilku dominujących pęcherzyków. Na podstawie naszej pracy możemy przypuszczać, że LAM może być przydatny jako potencjalny kandydat przeciwko uszkodzeniom oksydacyjnym i obiecujący środek do poprawy wykorzystania starych kur niosek.
OŚWIADCZENIE O DOSTĘPNOŚCI DANYCH
Surowe dane potwierdzające wnioski zawarte w tym artykule zostaną udostępnione przez autorów bez nieuzasadnionych zastrzeżeń.
OŚWIADCZENIE ETYCZNE
Wszystkie protokoły dotyczące zwierząt użyte w tym badaniu zostały zatwierdzone i przeprowadzone zgodnie z wytycznymi dotyczącymi etycznego traktowania zwierząt przez Institutional Animal Care and Use Committee of China Agricultural University (Pekin, Chiny; nr AW{0}}).
AUTORSKIE WKŁADY
Badanie zaprojektowali QL, WL, JiatZ, LZ, CJ, JianZ i QM. QL, WL, JiatZ, LZ, CJ, JianZ, SH i QM przeprowadzili eksperymenty i sporządzili szkic manuskryptu. QL, SH i QM dopracowali manuskrypt i zakończyli przesyłanie. QL, WL, JianZ, CJ i QM kierowali analizą danych eksperymentalnych. QL, SH, CJ i QM pomogli w ponownym przejrzeniu i przejrzeniu manuskryptu. Wszyscy autorzy przeczytali i zatwierdzili ostateczną wersję manuskryptu.
FINANSOWANIE
Badania te zostały sfinansowane przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (nr grantu 31772621), specjalny fundusz na rzecz programu China Agricultural Research System (nr grantu CARS-40-K08) oraz specjalny fundusz chińskich uniwersytetów Fundusz Naukowy (Grant nr 2018TC043).
PODZIĘKOWANIE
Dziękujemy wszystkim technikom w ośrodku dla zwierząt doświadczalnych Chińskiego Uniwersytetu Rolniczego za codzienną opiekę nad kurami nioskami.
MATERIAŁ UZUPEŁNIAJĄCY
Materiał uzupełniający do tego artykułu można znaleźć w Internecie.
BIBLIOGRAFIA
Saleh AA, Ahmed EaM, Ebeid TA. Wpływ suplementacji źródła fitoestrogenów na użytkowość rozrodczą, profil osocza, kwasy tłuszczowe żółtka i stan antyoksydacyjny u starszych kur niosek. Reprodukcja Domest Anim. (2019) 54: 846–54. doi 10.1111/rda.13432
Bock RR, Shore LS, Samberg Y, Perl S. Śmierć u hodowców brojlerów z powodu zapalenia jajowodów: możliwa rola zearalenonu. ptasi patol. (1986) 15:495–502. doi: 10.1080/03079458608436310
Cumming RB. Etiologia i znaczenie zapalenia jajowodów u kur niosek. Proc Aust Poult Sci Symp. (2001) 14:194-6.
Andrews JS, Griffith WH, Mead JF, Stein RA. Toksyczność oleju sojowego utlenionego powietrzem. J Nutr. (1960) 70:199-210. doi: 10.1093/jn/70.2.199
Liu JF, Lee YW. Suplementacja witaminą C przywraca zaburzony poziom witaminy E u świnek morskich karmionych utlenionym olejem do smażenia. J Nutr. (1998) 128:116– 22. doi: 10.1093/jn/128.1.116
Aw TY. Molekularne i komórkowe reakcje na stres oksydacyjny i zmiany równowagi oksydacyjno-redukcyjnej w jelicie. Am J Clin Nutr. (1999) 70:557-65. doi 10.1093/ajcn/70.4.557
Vázquez-Añón M, Jenkins T. Wpływ karmienia utlenionego tłuszczu z dietetycznymi przeciwutleniaczami lub bez na strawność składników odżywczych, azot mikrobiologiczny i metabolizm kwasów tłuszczowych. J Dairy Sci. (2007) 90:4361-7. doi 10.3168/js.2006-858
Lebda M, Gad S, Gaafar H. Wpływ kwasu liponowego na uszkodzenie jąder wywołane akrylamidem. Mater Sociomed. (2014) 26:208– 12. doi 10.5455/msm.2014.26.208-212
Kim JH, Jung MH, Kim JP, Kim HJ, Jung JH, Hahm JR i in. Kwas alfa-liponowy łagodzi wywołane promieniowaniem zapalenie błony śluzowej jamy ustnej u szczurów. Oncotarget. (2017) 8: 72739–47. doi: 10.18632/oncotarget.20286
Zoheir KM, Harisa GI, Allam AA, Yang L, Li X, Liang A i in. Wpływ kwasu alfa-liponowego na rozwój in vitro bydlęcych wtórnych pęcherzyków preantralnych. Teriogenologia. (2017) 88: 124–30.
Chen P, Ma QG, Ji C, Zhang JY, Zhao LH, Zhang Y i in. Kwas liponowy w diecie wpływa na zdolność antyoksydacyjną i status oksydacyjny brojlerów. Int J Mol Sci. (2011) 12:8476–88. doi 10.3390/ijms12128476
Jia R, Bao YH, Zhang Y, Ji C, Zhao LH, Zhang JY i in. Wpływ dietetycznego kwasu liponowego, acetylo-l-karnityny i płci na zdolność antyoksydacyjną, energię i metabolizm lipidów u brojlerów. Nauka o ptakach. (2014) 93:2809– 17. doi 10.3382/ps.2014-03921
Zhang Y, Jia R, Ji C, Ma Q, Huang J, Yin H i in. Wpływ dietetycznego kwasu alfa-liponowego i acetylo-L-karnityny na wydajność wzrostu i jakość mięsa brojlerów arbor acre. Australijczycy z Azji J Anim Sci. (2014) 27:996–1002. doi 10.5713/ajas.2013.13436
Henryksen EJ. Trening fizyczny i antyoksydacyjny kwas alfa-liponowy w leczeniu insulinooporności i cukrzycy typu 2. Free Radic Biol Med. (2006) 40:3–12. doi 10.1016/j.freeradbiomed.2005.04.002
Li X, Liu Z, Luo C, Jia H, Sun L, Hou B i in. Lipoamid chroni komórki nabłonka barwnikowego siatkówki przed stresem oksydacyjnym i dysfunkcją mitochondriów. Free Radic Biol Med. (2008) 44:1465-74.
Bisby RH, Parker AW. Reakcje przeciwutleniające kwasu dihydroliponowego i lipoamidu z trypletem durochinonu. Biochem Biophys Res Commun. (1998) 244:263-7. doi: 10.1006/bbrc.1998.8245
Packer L, Cadenas E. Kwas liponowy: metabolizm energetyczny i regulacja redoks transkrypcji i sygnalizacji komórkowej. J Clin Biochem Nutr. (2011) 48:26–32. doi: 10.3164/jcbn.11-005FR
Zhao L, Liu Z, Jia H, Feng Z, Liu J, Li X. Lipoamid działa jako przeciwutleniacz pośredni poprzez jednoczesną stymulację biogenezy mitochondriów i systemów enzymów antyoksydacyjnych fazy II w komórkach ARPE{0}}. PLoS JEDEN. (2015) 10:e0128502. doi: 10.1371/journal.pone.0128502
Hou Y, Li X, Peng S, Yao J, Bai F, Fang J. Lipoamid łagodzi stres oksydacyjny poprzez indukcję szlaku sygnałowego Nrf2/ARE w komórkach PC12. J Rolnicza Chemia Spożywcza. (2019) 67: 8227–34. doi: 10.1021/acs.jafc.9b02680
Bilska A, Włodek L. Kwas liponowy – lek przyszłości? Przedstawiciel Pharmacol (2005) 57:570–7. doi 10.1016/S0167-0115(96)02111-8
Zhou B, Wen M, Lin X, Chen YH, Gou Y, Li Y i in. Alfa-lipoamid łagodzi deficyty ruchowe i dynamikę mitochondriów w modelu choroby Parkinsona indukowanej przez 6-hydroksydopaminę. Neurotox Res. (2018) 33:759– 67. doi: 10,1007/s12640-017-9819-5
Baksta MR. Sympozjum fizjologiczne i endokrynologiczne: rola jajowodu w utrzymaniu trwałej płodności kur. J Anim Sci. (2011) 89:1323– 9. doi: 10.2527/jas.2010-3663
Lee SA, Whenham N, Bedford MR. Przegląd kwasu dokozaheksaenowego w żywieniu drobiu i trzody chlewnej: Konsekwencje wzbogaconych produktów zwierzęcych na wydajność i właściwości zdrowotne. Anim Nutr. (2019) 5:11– 21. doi: 10.1016/j.aninu.2018.09.001
Duracková Z. Niektóre aktualne spojrzenie na stres oksydacyjny. Physiol Res. (2010) 59: 459–69. doi: 10.33549/physiolres.931844
Song C, Liu B, Xu P, Xie J, Ge X, Zhou Q i in. Stres spowodowany uszkodzeniem utlenionego oleju rybiego w Megalobrama amblycephala: oceniany na podstawie wzrostu, fizjologii jelit i sygnalizacji zapalnej opartej na transkryptomie PI3K-Akt / NF-κB / TCR. Immunol ze skorupiaków ryb. (2018) 81: 446–55. doi 10.1016/j.fsi.2018.07.049
Persson HL, Svensson AI, Brunk UT. Kwas alfa-liponowy i alfa-lipoamid zapobiegają pękaniu i apoptozie lizosomów wywołanym przez utleniacze. Przedstawiciel Redox (2001) 6:327–34. doi: 10.1179/135100001101536472
Tirosh O, Sen CK, Roy S, Kobayashi MS, Packer L. Neuroprotekcyjne działanie kwasu alfa-liponowego i jego dodatnio naładowanego analogu amidu. Free Radic Biol Med. (1999) 26:1418-26. doi: 10.1016/S0891-5849(99)00014-3
Kothari D, Oh JS, Kim JH. Wpływ suplementacji diety ekstraktem ze sfermentowanych igieł sosny na produkcyjność, jakość jaj i parametry lipidowe surowicy kur niosek. Zwierząt. (2021) 11:1475. doi 10.3390/ani11051475
Liu HN, Liu Y, Hu LL, Suo YL, Zhang L, Jin F i in. Wpływ suplementacji diety kwercetyną na wydajność, jakość jaj, populacje mikroflory jelita ślepego i stan antyoksydacyjny u kur niosek. Nauka o ptakach. (2014) 93:347– 53. doi 10.3382/ps.2013-03225
Dai H, Lv Z, Hu C, Shi Z, Wei X, Jin S i in. Kwas alfa-liponowy poprawia użytkowość rozpłodową kur reprodukcyjnych w późnym okresie nieśności. J Anim Physiol Anim Nutr. (2020) 104: 1788–97. doi 10.1111/jpg. 13423
Li P, Yu X, Xie J, Yao X, Liu W, Yao J i in. Ekspresja transkryptu regulowanego kokainą i amfetaminą (CART) w jajniku kury. Biol Res. (2017) 50:18. doi 10.1186/s40659-017- 0123-x
Zhang Y, Ma W, Zhang Z, Liu F, Wang J, Yin Y i in. Wpływ Enterococcus faecalis na produkcję jaj, jakość jaj i mikroflorę jelita ślepego kur w późnym okresie nieśności. Arch Anim Nutr. (2019) 73:208– 21. doi: 10.1080/1745039X.2019.1591128
Divyashree S, Yajurvedi HN. Przewlekłe skutki stresu i ich odwracalność na jajowody i macicę u szczurów. Reprod Fertil Dev. (2018) 30:380–90. doi: 10.1071/RD17082
Jang HY, Ji SJ, Kim YH, Lee HY, Shin JS, Cheong HT i in. Przeciwutleniające działanie astaksantyny na stres oksydacyjny wywołany tlenkiem azotu na żywotność komórek i ekspresję genów w komórkach nabłonka jajowodu bydła oraz kompetencje rozwojowe bydlęcych zarodków IVM / IVF. Reprodukcja Domest Anim. (2010) 45:967–74. doi: 10.1111/j.1439-0531.2009.01469.x
Zhang Y, Hongtrakul K, Ji C, Ma QG, Hu XX. Wpływ dietetycznego kwasu alfa-liponowego na zdolność przeciwutleniającą i jakość mięsa brojlerów arbor acres. Australijczycy z Azji J Anim Sci. (2009) 22:996–1002. doi 10.5713/ajas.2009.90101
Arshad MS, Anjum FM, Asghar A, Khan MI, Yasin M, Shahid M i in. Stabilność lipidowa i profil antyoksydacyjny frakcji mikrosomalnej mięsa brojlerów wzbogaconej kwasem -liponowym i octanem -tokoferolu. J Rolnicza Chemia Spożywcza. (2011) 59:7346–52. doi: 10.1021/jf2002393
Odabasoglu F, Halici Z, Aygun H, Halici M, Atalay F, Cakir A i in. -Kwas liponowy ma właściwości przeciwzapalne i przeciwutleniające: badanie eksperymentalne na szczurach z przewlekłymi stanami zapalnymi wywołanymi karageniną i granulkami bawełny. Br J Nutr. (2011) 105:31–43. doi: 10.1017/S0007114510003107
Saiki T, Nakamura N. Wpływ insuliny na unieśmiertelnione szczurze komórki Schwanna, MSSF1. Int J Mol Sci. (2021) 22:5505. doi: 10.3390/ijms22115505
Han J, Ulewicz RJ. Ograniczanie reakcji zapalnych podczas aktywacji odporności wrodzonej. Nat Immunol. (2005) 6:1198-205. doi: 10.1038/ni1274
Guzik TJ, Touyz RM. Stres oksydacyjny, stan zapalny i starzenie się naczyń w nadciśnieniu. Nadciśnienie. (2017) 70:660– 7. doi: 10.1161/NADCIŚNIENIE AHA.117.07802
Wang Y, Zhao H, Shao Y, Liu J, Li J, Xing M. Miedź i/lub arsen indukują kaskadowy stres oksydacyjny, zapalenie zależne od czynnika jądrowego kappa B i brak równowagi immunologicznej, wyzwalając reakcję szoku cieplnego w nerkach kurczaka. Oncotarget. (2017) 8: 98103–16. doi: 10.18632/oncotarget.21463
Vargas-Mendoza N, Morales-González Á, Morales-Martínez M, SorianoUrsúa MA, Delgado-Olivares L, Sandoval-Gallegos EM, et al. Flawolignany z sylimaryny jako bioaktywatory Nrf2 i ich zastosowania terapeutyczne. Biomedycyna. (2020) 8:122. doi: 10.3390/biomedicines8050122
Di Tucci C, Di Feliciantonio M, Vena F, Capone C, Schiavi MC, Pietrangeli D i in. Kwas alfa-liponowy w położnictwie i ginekologii. Gynecol Endokrynol. (2018) 34: 729–33. doi: 10.1080/09513590.2018.1462320
Zhou JM, Qiu K, Wang J, Zhang HJ, Qi GH, Wu SG. Wpływ suplementacji diety seryną na użytkowość, jakość jaj, wskaźniki surowicze i odporność błony śluzowej jelita krętego u kur niosek żywionych dietą niskobiałkową. Nauka o ptakach. (2021) 100:101465. doi 10.1016/j.psj.2021.101465
Liu X, Lin X, Mi Y, Li J, Zhang C. Ekstrakt proantocyjanidyny z pestek winogron zapobiega starzeniu się jajników poprzez hamowanie stresu oksydacyjnego u kur. Oxid Med Cell Longev. (2018) 2018:9390810. doi: 10.1155/2018/9390810
Li P, Zhao Y, Yan S, Song B, Liu Y, Gao M i in. Saponina sojowa poprawia nieśność i funkcje odpornościowe kur niosek. J Anim Sci Biotechnologia. (2022) 12:126. doi: 10,1186/s40104-021-00647-2
Marinho PM, Salomon TB, Andrade AS, Behling CS, Putti JS, Benfato MS i in. Wpływ n-3 długołańcuchowych wielonienasyconych kwasów tłuszczowych i kwasu liponowego na serce w modelu menopauzy szczura po wycięciu jajników. Wolne Radic Res. (2019) 53: 669–79. doi: 10.1080/10715762.2019.1620938
Nair DV, Rani MU, Reddy AG, Kumar BK, Reddy MA, Lakshman M i in. Ochronne działanie kwasu alfa-liponowego i kwasów tłuszczowych omega -3 przed toksycznością jajników wywołaną przez cyklofosfamid u szczurów. Świat weterynarza. (2020) 13: 188–96. doi 10.14202/vetworld.2020.188-196
Tao Z, Song W, Zhu C, Xu W, Liu H, Zhang S i in. Porównawcza analiza transkryptomiczna jajników kaczek o wysokiej i niskiej produkcji jaj. Nauka o ptakach. (2017) 96: 4378–88. doi: 10.3382/ps/pex229
Prasad S, Tiwari M, Pandey AN, Shrivastav TG, Chaube SK. Wpływ stresu na jakość oocytów i wyniki reprodukcyjne. J Biomed Sci. (2016) 23:36. doi: 10,1186/s12929-016-0253-4
Talebi A, Zavareh S, Kashani MH, Lashgarbluki T, Karimi I. Wpływ kwasu alfa-liponowego na kompetencje rozwojowe izolowanych przedantralnych myszy. J Assist Reprod Genet. (2012) 29: 175–83. doi: 10,1007/s10815-011-9706-6
Gomes RG, Silva CB, González SM, Oliveira RL, Max MC, Lisboa LA i in. Wpływ kwasu alfa-liponowego (ALA) na kompetencje rozwojowe końskich pęcherzyków przedantralnych w hodowli krótkoterminowej. Teriogenologia. (2018) 105:169– 73. doi 10.1016/j.theriogenology.2017.09.023 pęcherzyki przedantralne w hodowli krótkoterminowej. Teriogenologia. (2018) 105:169–73. doi: 10.1016/j.theriogenology.2017.09.023
Konflikt interesów:Autorzy oświadczają, że badanie zostało przeprowadzone przy braku jakichkolwiek powiązań handlowych lub finansowych, które mogłyby być interpretowane jako potencjalny konflikt interesów.
Uwaga wydawcy:Wszystkie roszczenia wyrażone w tym artykule są wyłącznie roszczeniami autorów i niekoniecznie odzwierciedlają roszczenia ich stowarzyszonych organizacji lub wydawcy, redaktorów i recenzentów. Żaden produkt, który może być oceniany w tym artykule, lub roszczenie, które może zostać złożone przez jego producenta, nie jest gwarantowane ani zatwierdzone przez wydawcę.
【Więcej informacji:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】
