Przegląd składników florotanin w Fucales, część 4
Jul 03, 2023
6. Uwagi końcowe
Podsumowując, Fucales stanowią rozległą grupę gatunków wodorostów o znacznej zmienności pod względem związków florotaninowych. Testy spektrofotometryczne mogą być użytecznym narzędziem do wysokowydajnych, łatwych i opłacalnych badań przesiewowych zawartości florotaniny. Jednak aby oddzielić, określić ilościowo i scharakteryzować te związki, niezbędne są solidne techniki analityczne. Obecnie MS w połączeniu z HPLC oferuje zadowalające podejście do rozdzielania i charakteryzowania oligomerycznych florotanin. Znaczące ulepszenia przyniosły również opracowanie bardziej specjalistycznego sprzętu, takiego jak UHPLC i HRMS. Jednak gdy potrzebne są pełne szczegóły dotyczące pozycji wiązań i form izomerycznych, tylko NMR może zaoferować taką pojemność.
Glikozyd cistanche może również zwiększać aktywność SOD w tkankach serca i wątroby oraz znacznie zmniejszać zawartość lipofuscyny i MDA w każdej tkance, skutecznie wymiatając różne reaktywne rodniki tlenowe (OH-, H₂O₂, itp.) i chroniąc przed uszkodzeniem DNA spowodowanym przez rodniki OH. Glikozydy fenyloetanoidowe Cistanche mają silne zdolności wymiatania wolnych rodników, wyższą zdolność redukującą niż witamina C, poprawiają aktywność SOD w zawiesinie plemników, zmniejszają zawartość MDA oraz mają pewien wpływ ochronny na funkcję błony plemników. Polisacharydy Cistanche mogą zwiększać aktywność SOD i GSH-Px w erytrocytach i tkankach płuc eksperymentalnie starzejących się myszy wywołaną przez D-galaktozę, a także zmniejszać zawartość MDA i kolagenu w płucach i osoczu oraz zwiększać zawartość elastyny, mają dobry efekt zmiatania DPPH, przedłuża czas niedotlenienia u starzejących się myszy, poprawia aktywność SOD w surowicy i opóźnia fizjologiczną degenerację płuc u doświadczalnie starzejących się myszy Eksperymenty z degeneracją morfologiczną komórek wykazały, że Cistanche ma dobrą zdolność przeciwutleniającą i ma potencjał, aby być lekiem do zapobiegania i leczenia chorób związanych ze starzeniem się skóry. Jednocześnie echinakozyd w Cistanche ma znaczną zdolność wychwytywania wolnych rodników DPPH i ma zdolność wychwytywania reaktywnych form tlenu i zapobiegania degradacji kolagenu wywołanej przez wolne rodniki, a także ma dobry wpływ naprawczy na uszkodzenia anionowe wolnych rodników tyminy.
Niemniej jednak sprzęt ten nie należy do najtańszych/dostępnych dla laboratoriów. Dostępność bardziej standardowych związków mogłaby przyczynić się do lepszego wykorzystania HPLC, ponieważ wygenerowałaby wiarygodne biblioteki do porównań. Alternatywnie, zbadanie i zidentyfikowanie powszechnych związków PT za pomocą spektroskopii NMR, powiązanie ich z czasami retencji HPLC i danymi spektralnymi UV może stanowić kolejny krok naprzód dla społeczności badawczej.
Autorskie Wkłady:Konceptualizacja — MDC i SMC; przegląd literatury i pisanie pierwotnej wersji roboczej — MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Wszyscy autorzy brali udział w pisaniu — recenzowaniu i redagowaniu. Wszyscy autorzy przeczytali i zaakceptowali opublikowaną wersję manuskryptu.
Finansowanie: Ta praca otrzymała wsparcie finansowe z funduszy krajowych PT (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia i Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior) w ramach projektów UIDB/50006/2020 i UIDP/50006/2020. Dzięki PTDC/BAA-AGR/31015/2017, „Algaphlor—Brown algae florotannins: From bioavailability to the development of new Function Foods”, współfinansowany ze środków Programu Operacyjnego Konkurencyjność i Umiędzynarodowienie – POCI, w ramach Europejskiego Funduszu Rozwoju Regionalnego (FEDER) oraz Fundacja Nauki i Technologii (FCT), za pośrednictwem funduszy krajowych. Silva S. dziękuje FCT za finansowanie w ramach programu DL 57/2016 – Norma Transitória (Ref. SFRH/BPD/74299/2010).
Konflikt interesów:Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.
Bibliografia
1. Cho, GY; Rousseau, F.; de Reviers, B.; Buu, SM; Reviers, BDE; Cho, GY; Rousseau, F.; Reviers, BDE Związki filogenetyczne w Fucales (Phaeophyceae) oceniane przez fotosystem I kodujący sekwencje PsaA. Phycologia 2006, 45, 512–519. [Odnośnik]
2. Baweja, P.; Kumar, S.; Sahoo, D.; Levine, I. Biologia wodorostów. W wodorostach w zdrowiu i zapobieganiu chorobom; Elsevier: Amsterdam, Holandia, 2016; s. 41–106.
3. Bermejo, R.; Chefaoui, RM; Engelen, AH; Buonomo, R.; Neiva, J.; Ferreira-Costa, J.; Pearson, Georgia; Marba, N.; Duarte, CM; Airoldi, L.; i in. Lasy morskie śródziemnomorsko-atlantyckiego kompleksu Cystoseira tamariscifolia pokazują południowo-iberyjski hotspot genetyczny i brak izolacji reprodukcyjnej w Parapatry. nauka Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]
4. Montero, L.; Herrero, M.; Ibáñez, E.; Iba, I.; Ibáñez, I.; Cifuentes, A. Oddzielanie i charakteryzacja florotannin z alg brunatnych Cystoseira abies-marina za pomocą kompleksowej dwuwymiarowej chromatografii cieczowej. Elektroforeza 2014, 35, 1644–1651. [CrossRef] [PubMed]
5. Jégou, C.; Connan S.; Bihannic, I.; Cérantola, S.; Guerard, F.; Stiger-Pouvreau, V. Florotanina i zawartość pigmentu w rodzimych gatunkach Sargassaceae tworzących baldachim żyjących w międzypływowych basenach skalnych w Bretanii (Francja): jakikolwiek związek z ich rozmieszczeniem pionowym i fenologią? Marzec Narkotyki 2021, 19, 504. [CrossRef]
6. Guiry, doktor medycyny; Guiry, GM; Sargassum, C. Agardh, 1820 — AlgaeBase. World-Wide Electronic Publication, National University of Ireland, Galway.
7. Amador-Castro, F.; García-Cayuela, T.; Alper, HS; Rodriguez-Martinez, V.; Carrillo-Nieves, D. Waloryzacja biomasy pelagicznej Sargassum do zrównoważonych zastosowań: aktualne trendy i wyzwania. J. Środowisko. Manag. 2021, 283, 112013. [Odsyłacz]
8. Daniel, SL; Cyryl, B.; Leonel, P. Produkcja bionawozów z Ascophyllum nodosum i Sargassum muticum (Phaeophyceae). J.Oceanol. Limnol. 2019, 37, 918–927. [Odnośnik]
9. Ghaffar Shahriari, A.; Mohkami, A.; Niazi, A.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Zastosowanie ekstraktu z alg brunatnych (Sargassum angustifolium) do poprawy odporności na suszę rzepaku (Brassica napus L.). Iranu. J. Biotechnologia. 2021, 19, e2775. [Odnośnik]
10. Oliveira, JV; Alves, MM; Costa, JC Optymalizacja produkcji biogazu z Sargassum Sp. Wykorzystanie projektu eksperymentów do oceny wspólnego trawienia gliceryną i odpadowym olejem do smażenia. Biosurowiec. Techno. 2015, 175, 480–485. [Odnośnik]
11. Giovanna Lopresto, C.; Paletta R.; Filippelli, P.; Galluccio, L.; de la Rosa, C.; Amaro, E.; Jáuregui-Haza, U.; Atilio de Frias, J. Sargassum Inwazja na Karaiby: okazja dla społeczności przybrzeżnych do produkcji bioenergii w oparciu o biorafinerię - przegląd. Waloryzacja biomasy odpadowej 2022, 13, 2769–2793. [Odnośnik]
12. Luis Godínez-Ortega, J.; Cuatlán-Cortés, JV; Lopez-Bautista, JM; van Tussenbroek, BI Historia naturalna pływających gatunków Sargassum (Sargasso) z Meksyku. W historii naturalnej i ekologii Meksyku i Ameryki Środkowej; IntechOpen: Londyn, Wielka Brytania, 2021.
13. Soleimani, S.; Yousefzadi, M.; Nezhad, SBM; Pożaritskaja, ON; Shikov, AN Ocena frakcji wyekstrahowanych z Polycladia Myrica: aktywność biologiczna, efekt ochronny przed promieniowaniem UVR i stabilność formuły kremu na jej podstawie. J. Appl. Fikol. 2022, 34, 1763–1777. [Odnośnik]
14. Serrao, EA; Alicja, Luizjana; Brawley, SH Ewolucja Fucaceae (Phaeophyceae) na podstawie NrDNA-ITS. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [Odnośnik]
15. Patarra, RF; Paiva, L.; Neto, sztuczna inteligencja; Lima, E.; Baptista, J. Wartość odżywcza wybranych makroalg. J. Appl. Fikol. 2011, 23, 205–208. [Odnośnik]
16. Lopes, G.; Barbosa, M.; Vallejo, F.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Valentão, P.; Pereira, DM; Ferreres, F. Profilowanie florotanin z Fucus spp. wybrzeża północnej Portugalii: podejście chemiczne metodą HPLC-DAD-ESI/MSn i UPLC-ESI-QTOF/MS. Algal Res. 2018, 29, 113–120. [Odnośnik]
17. Stansbury, J.; Saunders, P.; Winston, D. Promowanie zdrowej funkcji tarczycy za pomocą jodu, morszczynu pęcherzykowatego, Guggul i Iris. J. Restor. Med. 2013, 1, 83–90. [Odnośnik]
18. Guiry, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753 — AlgaeBase. World-Wide Electronic Publication, National University of Ireland, Galway.
19. Rasul, F.; Gupta S.; Olas, JJ; Gechev, T.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. Gruntowanie ekstraktem z wodorostów znacznie poprawia tolerancję na suszę u Arabidopsis. Int. J. Mol. nauka 2021, 22, 1469. [CrossRef] [PubMed]
20. Shukla, PS; Mantin, EG; Adil, M.; Bajpai, S.; Critchley, At; Prithiviraj, B. Biostymulatory na bazie Ascophyllum nodosum: zrównoważone zastosowania w rolnictwie do stymulacji wzrostu roślin, tolerancji na stres i zarządzania chorobami. Przód. Nauka o roślinach. 2019, 10, 655. [CrossRef] [PubMed]
21. Vodouhe, M.; Marois, J.; Guay, V.; Leblanc, N.; Weisnagel, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Marginalny wpływ ekstraktu z brązowych wodorostów Ascophyllum nodosum i Fucus vesiculosus na odpowiedź metaboliczną i zapalną u osób z nadwagą i otyłością w stanie przedcukrzycowym. Marzec Narkotyki 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]
22. Fraser, CI; Vel, M.; Nelson, Waszyngton; Macaya, EC; Siano, CH; McCarthy, C.; Velásquez, M.; Nelson, Waszyngton; Macaya, EC; Hay, CH Biogeograficzne znaczenie pływalności w makroglonach: studium przypadku rodzaju Southern Bull-Kelp Durvillaea (Phaeophyceae), w tym opisy dwóch nowych gatunków. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [Odnośnik]
23. Kapłon, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Skene, C.; Lacey, E.; Gil, JH; Friedel, T.; Wadsworth, D.; Jobling, M.; i in. Morskie nicieniocydy: tetrahydrofurany z południowej australijskiej algi brunatnej, Notheia Anomaliz. Tetrahedron 1998, 54, 2227–2242. [Odnośnik]
24. Mueller, R.; Wright, JT; Bolch, CJSS Demografia historyczna i ścieżki kolonizacji szeroko rozpowszechnionych wodorostów międzypływowych Hormosira banksii (Phaeophyceae) w południowo-wschodniej Australii. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [Odnośnik]
25. Clayton, MN Circumscription and filogenetic Relationships of the Southern Hemisphere Family Seirococcaceae (Phaeophyceae). Nerw. Marzec 1994, 37, 213–220. [Odnośnik]
26. Kumar, LRG; Paweł, PT; Anas, KK; Tejpal, CS; Chatterjee, NS; Anupama, TK; Mateusz S.; Ravishankar, CN Florotanniny – Perspektywy bioaktywności i ekstrakcji. J. Appl. Fikol. 2022, 34, 2173–2185. [CrossRef] [PubMed]
27. Hermund DB; Torsteinsen, H.; Vega, J.; Figueroa, Floryda; Jacobsen, C. Badanie przesiewowe nowych kosmeceutyków z brązowych alg Fucus vesiculosus o właściwościach przeciwutleniających i fotoochronnych. Narkotyki morskie 2022, 20, 687. [CrossRef]
28. Lashika Blue Filter Sunscreen SPF 45 PA plus plus plus z brązowymi wodorostami — 30 ml.
29. Hello Sunny Essence Sun Stick Glow SPF50 plus Pa plus plus plus plus .
30. Koivikko, R.; Loponen, J.; Honkanen, T.; Jormalainen, V. Zawartość rozpuszczalnych, związanych ze ścianą komórkową i wydzielanych florotannin w brązowych algach Fucus vesiculosus, z implikacjami dla ich funkcji ekologicznych. J. Chem. eko. 2005, 31, 195–212. [Odnośnik]
31. Machu, L.; Misurcova, L.; Vavra Ambrozova, J.; Orsavova, J.; Mlcek, J.; Sochor, J.; Jurikova, T. Zawartość fenoli i zdolność przeciwutleniająca w produktach żywnościowych z alg. Cząsteczki 2015, 20, 1118–1133. [Odnośnik]
32. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Związki fenolowe i działanie przeciwutleniające wybranych gatunków wodorostów z wybrzeża Danii. Chemia spożywcza. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]
33. Kim, SM; Kang, SW; Jeon, J.-S.; Jung, Y.-J.; Kim, W.-R.; Kim, CY; Hm, B.-H. Oznaczanie głównych florotannin w rowerach Eisenia za pomocą chromatografii oddziaływań hydrofilowych: zmienność sezonowa i charakterystyka ekstrakcji. Chemia spożywcza. 2013, 138, 2399–2406. [Odnośnik]
34. Connan, S.; Goulard, F.; Stiger, V.; Deslandes, E.; Gall, EA międzygatunkowe i czasowe zróżnicowanie poziomów florotaniny w zespole brunatnic. Nerw. Marzec 2004, 47, 410–416. [Odnośnik]
35. Lopes, G.; Sousa, C.; Silva, LR; Pinto, E.; Andrade, PB; Bernardo, J.; Mouga, T.; Valentão, P. Czy oczyszczone ekstrakty florotannin mogą stanowić nową farmakologiczną alternatywę dla infekcji drobnoustrojowych z towarzyszącymi stanami zapalnymi? PLoS ONE 2012, 7, e31145. [Odnośnik]
36. Obluchinskaya, ED; Pożaritskaja, ON; Zacharow, DV; Flisyuk, EV; Terninko, II; Generalova, YE; Smekhova, IE; Shikov, AN Skład biochemiczny i właściwości przeciwutleniające Fucus vesiculosus z regionu arktycznego. Marzec Narkotyki 2022, 20, 193. [CrossRef]
37. Pedersen, A. Badania zawartości fenolu i wychwytu metali ciężkich w fukoidach. W XI Międzynarodowym Sympozjum Wodorostów. Rozwój hydrobiologii; Ptak, CJ, Ragan, MA, wyd.; Springer: Dordrecht, Holandia, 1984; Tom 22, s. 498–504.
38. Connan, S.; Stengel, DB Wpływ zasolenia otoczenia i miedzi na algi brunatne: 2. Interaktywny wpływ na pulę fenolową i ocena zdolności florotaniny do wiązania metali. Wodny. Toksykol. 2011, 104, 1–13. [CrossRef] [PubMed]
39. Kamiya, M.; Nishio, T.; Yokoyama, A.; Yatsuya, K.; Nishigaki, T.; Yoshikawa, S.; Ohki, K. Zmienność sezonowa florotaniny w gatunkach Sargassacean z wybrzeża Morza Japońskiego. Fikol. Rez. 2010, 58, 53–61. [Odnośnik]
40. Ragan, MA; Jensen, A. Badania ilościowe nad fenolami alg brunatnych. II. Sezonowa zmienność zawartości polifenoli w Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. i Fucus vesiculosus (L.). J. Exp. marzec Biol. eko. 1978, 34, 245–258. [Odnośnik]
41. Pawia, H.; Toth, GB Wpływ światła i azotu na zawartość florotanin w wodorostach brunatnych Ascophyllum nodosum i Fucus vesiculosus. Hydrobiologia 2000, 440, 299–305. [Odnośnik]
42. Pawia, H.; Brock, E. Czynniki zewnętrzne wpływające na produkcję florotaniny w algach brunatnych Ascophyllum nodosum. marzec Ecol. Wałówka. Ser. 2000, 193, 285–294. [Odnośnik]
43. Tala, F.; Velásquez, M.; Mansilla, A.; Macaya, EC; Thiel, M. Latitudinalne i sezonowe skutki krótkoterminowej aklimatyzacji pływających gatunków wodorostów z południowo-wschodniego Pacyfiku. J. Exp. marzec Biol. eko. 2016, 483, 31–41. [Odnośnik]
44. Sardari, RRRR; Prothmann, J.; Gregersen, O.; Turner, C.; Karlsson, EN Identyfikacja florotanin w algach brunatnych, Saccharina Latissima i Ascophyllum nodosum za pomocą ultrawysokosprawnej chromatografii cieczowej połączonej z tandemową spektrometrią mas o wysokiej rozdzielczości. Cząsteczki 2021, 26, 43. [CrossRef]
45. Tierney, MS; Soler-Vila, A.; Rai, Dania; Croft, AK; Brunton, NP; Smyth, TJ UPLC-MS Profilowanie polimerów florotaniny o niskiej masie cząsteczkowej w Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata i Fucus spiralis. Metabolomika 2014, 10, 524–535. [Odnośnik]
46. Catarino, MD; Silva, AAMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Silva, AAMS; Cardoso, SM Florotaniny z Fucus vesiculosus: Modulacja odpowiedzi zapalnej poprzez blokowanie szlaku sygnałowego NF-KB. Int. J. Mol. nauka 2020, 21, 6897. [Odsyłacz]
47. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Phlorotannin Ekstrakty z Fucales scharakteryzowane przez HPLC-DAD-ESI-MSn: Podejścia do zdolności hamowania hialuronidazy i właściwości przeciwutleniających. Marzec Narkotyki 2012, 10, 2766–2781. [Odnośnik]
48. Catarino, MD; Silva, AMS; Mateus, N.; Cardoso, SM Optymalizacja ekstrakcji florotannin z Fucus vesiculosus i ocena ich potencjału w zapobieganiu zaburzeniom metabolicznym. Marzec Narkotyki 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]
49. Li, Y.; Fu, X.; Duan, D.; Liu, X.; Xu, JJJ; Gao, X. Ekstrakcja i identyfikacja florotanin z alg brunatnych, Sargassum wrzecionowaty (Harvey) Setchell. Marzec Narkotyki 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]
50. Wang, T.; Jónsdóttir, R.; Liu, H.; Gu, L.; Kristinsson, HG; Raghavan, S.; Ólafsdóttir, G. Właściwości przeciwutleniające florotannin ekstrahowanych z brunatnych alg Fucus vesiculosus. J. Agric. Chemia spożywcza. 2012, 60, 5874–5883. [CrossRef] [PubMed]
51. Obluchinskaya, ED; Daurcewa, AV; Pożaritskaja, ON; Flisyuk, EV; Shikov, AN Naturalne głębokie rozpuszczalniki eutektyczne jako alternatywy dla ekstrakcji florotanin z brązowych alg. Farmacja. chemia J. 2019, 53, 243–247. [Odnośnik]
52. Kadam, SU; Tiwari, BK; O'Donnell, CP; O'Donnell, CP Zastosowanie nowych technologii ekstrakcji substancji bioaktywnych z alg morskich. J. Agric. Chemia spożywcza. 2013, 61, 4667–4675. [CrossRef] [PubMed]
53. Michalak, I.; Chojnacka, K. Ekstrakty z alg: technologia i postępy. inż. Nauka o życiu. 2014, 14, 581–591. [Odnośnik]
54. Grosso, C.; Valentão, P.; Ferreres, F.; Andrade, PB; Mayer, AM Alternatywne i wydajne metody ekstrakcji związków pochodzenia morskiego. Marzec Narkotyki 2015, 13, 3182–3230. [Odnośnik]
55. Meng, W.; Mu, T.; Słońce, H.; Garcia-Vaquero, M. Phlorotannins: przegląd metod ekstrakcji, charakterystyki strukturalnej, bioaktywności, biodostępności i przyszłych trendów. Algal Res. 2021, 60, 102484. [Odsyłacz]
56. Lopes, G.; Barbosa, M.; Andrade, PB; Valentão, P. Phlorotannins z Fucales: Potencjał kontrolowania hiperglikemii i powikłań naczyniowych związanych z cukrzycą. J. Appl. Fikol. 2019, 31, 3143–3152. [Odnośnik]
57. Obluchinskaya, ED; Pożaritskaja, ON; Zacharowa, LV; Daurcewa, AV; Flisyuk, EV; Shikov, Skuteczność naturalnych głęboko eutektycznych rozpuszczalników do ekstrakcji związków hydrofilowych i lipofilowych z Fucus vesiculosus. Cząsteczki 2021, 26, 4198. [Odsyłacz]
58. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Sattari, Z.; Al-Haddad, S.; Fakhraldeen, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Asystowana enzymami ekstrakcja związków bioaktywnych z brązowych wodorostów i charakterystyka. J. Appl. Fikol. 2020, 32, 615–629. [Odnośnik]
59. Ank, G.; Antônio Perez Da Gama, B.; Pereira, RC Zróżnicowanie szerokości geograficznej w zawartości florotaniny z południowo-zachodnich wodorostów atlantyckich. PeerJ 2019, 7, e7379. [CrossRef] [PubMed]
60. Tabassum, MR; Xia, A.; Murphy, JD Sezonowa zmienność składu chemicznego i produkcji biometanu z brązowych wodorostów Ascophyllum nodosum. Biosurowiec. Techno. 2016, 216, 219–226. [Odnośnik]
61. Hermund DB; Heung, Sycylia; Thomsen, BR; Akoh, CC; Jacobsen, C. Poprawa stabilności oksydacyjnej emulsji do pielęgnacji skóry za pomocą ekstraktów przeciwutleniających z brązowej algi Fucus vesiculosus. J. Am. Chemia naftowa soc. 2018, 95, 1509–1520. [Odnośnik]
62. Ummat, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Optymalizacja częstotliwości ultradźwięków, czasu ekstrakcji i rozpuszczalnika do odzyskiwania polifenoli, florotanin i powiązanej aktywności przeciwutleniającej z brązowych wodorostów. Marzec Narkotyki 2020, 18, 250. [CrossRef]
63. Sumampouw, GA; Jacobsen, C.; Getachew, AT Optymalizacja ekstrakcji przeciwutleniaczy fenolowych z Fucus vesiculosus metodą ekstrakcji cieczą pod ciśnieniem. J. Appl. Fikol. 2021, 33, 1195–1207. [Odnośnik]
64. Yuan, Y.; Zhang, J.; Wentylator, J.; Clark, J.; Shen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Ekstrakcja związków fenolowych wspomagana mikrofalami z czterech ekonomicznych gatunków makroalg brunatnych i ocena ich aktywności przeciwutleniającej i wpływu hamującego na -amylazę, -glukozydazę, lipazę trzustkową i tyrozynazę. Żywność Rez. Int. 2018, 113, 288–297. [Odnośnik]
65. Cagalj, M.; Skroża D.; Tabanelli, G.; Özogul, F.; Šimat, V. Maksymalizacja zdolności antyoksydacyjnej Padina pavonica poprzez wybór odpowiednich metod suszenia i ekstrakcji. Procesy 2021, 9, 587. [Odsyłacz]
66. Amarante, SJ; Catarino, MD; Marçal, C.; Silva, AMS; Ferreira R.; Cardoso, SM Ekstrakcja florotannin wspomagana mikrofalami z Fucus vesiculosus. Marzec Narkotyki 2020, 18, 559. [CrossRef]
67. Bian, C.; Gao, J.; Leng, X.; Słońce, C .; Dai, L.; Xu, Z. Płyn zatrzymujący wilgoć i sposób jego przygotowania. Chiński patent CN103520065A, 22 stycznia 2014 r.
68. da Silva, JRM; Alves, CMM; Pinteus, SFG; Martins, cel; Freitas, RPF; Pedrosa, RFP Proces uzyskiwania ekstraktu wzbogaconego florotaniną o działaniu antyenzymatycznym do stosowania w dermatologii. Patent europejski EP3910064, 17 listopada 2021 r.
69. Prigent, A. Metoda otrzymywania ekstraktów z alg morskich. Patent międzynarodowy WO2015071477A1, 21 maja 2015 r.
70. Stiger-Poivreau, V.; Connan S.; Gager, L.; Coiffard, L.; Couteau, C.; Decoster, S.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Ekstrakty z alg brunatnych, w tym związki fenolowe i ich zastosowania kosmetyczne. Patent francuski FR3095348A1, 30 października 2020 r.
71. Tae, HL; Lee, JM; Park, SY Proces przygotowania potraktowanych enzymami ekstraktów z Hizikia fusiforme o działaniu wzmacniającym odporność oraz zawierającej je funkcjonalnej żywności i kompozycji farmaceutycznej. Patent koreański KR20140032101A, 14 marca 2014 r.
72. Liu, X.; Yuan, W.; Sharma-shivappa, R.; Zanten, J. Van Aktywność przeciwutleniająca florotannin z alg brunatnych. Int. J. Agric. Biol. inż. 2017, 10, 184–191. [Odnośnik]
73. Abdelhamid, A.; Jouini, M.; Bel Haj Amor, H.; Mzoughi, Z.; Dridi, M.; Ben Said, R.; Bouraoui, A. Analiza fitochemiczna i ocena potencjału przeciwutleniającego, przeciwzapalnego i przeciwbólowego frakcji bogatych w florotaninę z trzech śródziemnomorskich wodorostów brunatnych. Mar. Biotechnologia. 2018, 20, 60–74. [CrossRef] [PubMed]
74. Lamuela-Raventós, RM Folin-Ciocalteu Metoda pomiaru całkowitej zawartości fenoli i zdolności przeciwutleniającej. W pomiarze aktywności i pojemności przeciwutleniaczy: najnowsze trendy i zastosowania; John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, USA, 2017; s. 107–115. ISBN9781119135388.
75. Cotas, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonc ˛alves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Fenole z wodorostów: od ekstrakcji do zastosowań. Marzec Narkotyki 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]
76. Everette, JD; Bryant, QM; zielony, rano; Opactwo, Japonia; Wangila, GW; Walker, RB Dokładne badanie reaktywności różnych klas związków w stosunku do odczynnika Folina-Ciocalteu. J. Agric. Chemia spożywcza. 2010, 58, 8139–8144. [CrossRef] [PubMed]
77. Stern, JL; Hagerman, AE; Steinberg, PD; Zima, FC; Estes, JA Nowy test do ilościowego określania florotanin z alg brunatnych i porównania z poprzednimi metodami. J. Chem. eko. 1996, 22, 1273–1293. [Odnośnik]
78. Steevensz, AJ; MacKinnon, SL; Hankinson, R.; Rzemiosło, C.; Connan S.; Stengel DB; Melanson, JE Profilowanie florotannin w makroalgach brunatnych za pomocą chromatografii cieczowej - spektrometrii mas o wysokiej rozdzielczości. Fitochem. Analny. 2012, 23, 547–553. [Odnośnik]
79. Agregán, R.; Munekata, PES; Franco, D.; Dominguez R.; Carballo, J.; Lorenzo, JM Związki fenolowe z trzech gatunków wodorostów brunatnych przy użyciu LC-DAD – ESI-MS / MS. Żywność Rez. Int. 2017, 99, 979–985. [Odnośnik]
80. Glombitza, KW; Schmidt, A. Trihydroksyfloretole z brązowej algi Carpophyllum angustifolium. Fitochemia 1999, 51, 1095–1100. [Odnośnik]
81. Sailer, B.; Glombitza, KW floretole i fukofloretole z brązowej algi Cystophora retroflexa. Fitochemia 1999, 50, 869–881. [Odnośnik]
82. Glombitza, KW; Keusgen, M.; Hauperich, S. Fucophlorethols z alg brunatnych Sargassum spinuligerum i Cystophora torulosa. Fitochemia 1997, 46, 1417–1422. [Odnośnik]
83. Glombitza, KW; Keusgen, M. Fuhalole i Deshydroksyfuhalole z Brown Alga Sargassum spinuligerum. Fitochemia 1995, 38, 987–995. [Odnośnik]
84. Glombitza, KW; Schmidt, A. Nonhalogenowane i halogenowane florotaniny z brązowej algi Carpophyllum angustifolium. J. Nat. Szturchać. 1999, 62, 1238–1240. [Odnośnik]
85. Koch, M.; Gregson, RP Bromowane floretole i niehalogenowane florotaniny z brązowej algi Cystophora zatłoczone. Fitochemia 1984, 23, 2633–2637. [Odnośnik]
86. Sailer, B.; Glombitza, KW Halogenowane floretole i fukofloretole z brązowej algi Cystophora retroflexa. Nat. Toksyny 1999, 7, 57–62. [Odnośnik]
87. Koivikko, R.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Analiza wysokosprawnej chromatografii cieczowej florotanin z brązowej algi Fucus vesiculosus. Fitochem. Analny. 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]
88. Corona, G.; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hotchkiss, S.; Gill, C.; Yaqoob, P.; Spencer, JPE; Rowland, I. Modyfikacje żołądkowo-jelitowe i biodostępność florotannin brązowych wodorostów i wpływ na markery stanu zapalnego. br. J. Nutr. 2016, 115, 1240–1253. [CrossRef] [PubMed]
89. Sentkowska, A.; Pyrzyńska, K. Chromatografia HILIC: potężna technika w analizie polifenoli. w Polifenole w Roślinach; Prasa akademicka: Cambridge, MA, USA, 2019; s. 341–351. [Odnośnik]
90. Marrubini, G.; Appelblad, P.; Maietta, M.; Papetti, A. Chromatografia interakcji hydrofilowych w analizie matryc żywnościowych: zaktualizowana recenzja. Chemia spożywcza. 2018, 257, 53–66. [Odnośnik]
91. Pyrzyńska, K.; Sentkowska, A. Najnowsze osiągnięcia w rozdzielaniu HPLC fenolowych związków spożywczych. Krytyk. Wielebny Anal. chemia 2015, 45, 41–51. [Odnośnik]
92. Montero, L.; Sanchez-Camargo, AP; García-Cañas, V.; Tanniou, A.; Stiger-Pouvreau, V.; Russo, M.; Rastrelli, L.; Cifuentes, A.; Herrero, M.; Ibáñez, E. Aktywność antyproliferacyjna i charakterystyka chemiczna za pomocą kompleksowej dwuwymiarowej chromatografii cieczowej sprzężonej ze spektrometrią mas florotannin z brązowej makroalgi Sargassum muticum zebranej na wybrzeżach północnoatlantyckich. J. Chromatograf. 2016, 1428, 115–125. [Odnośnik]
93. Swartz, M. Detektory HPLC: krótki przegląd. J. Liq. Chromatograf. Relat. Techno. 2010, 33, 1130–1150. [Odnośnik]
94. Vissers, AM; Caligiani, A.; Sforza S.; Vincken, JP; Gruppen, H. Phlorotannin Skład Laminaria digitata. Fitochem. Analny. 2017, 28, 487–495. [Odnośnik]
95. Olate-Gallegos, C.; Barriga, A.; Vergara, C.; Fredes, C.; Garcia, P.; Giménez, B.; Robert, P. Identyfikacja polifenoli z ekstraktów z chilijskich wodorostów brunatnych metodą LC-DAD-ESI-MS/MS. J. Aquat. Produkcja żywności Techno. 2019, 28, 375–391. [Odnośnik]
96. Catarino, MD; Fernandes, I.; Oliveira, H.; Carrascal, M.; Ferreira R.; Silva, AMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Cardoso, SM Aktywność przeciwnowotworowa florotanin pochodzących z Fucus vesiculosus poprzez aktywację sygnałów apoptotycznych w liniach komórkowych guza żołądka i jelita grubego. Int. J. Mol. nauka 2021, 22, 7604. [CrossRef] [PubMed]
97. Audibert, L.; Fauchon, M.; Blanc, N.; Hauchard, D.; Ar Gall, E.; Gall, EA Związki fenolowe w wodorostach brunatnych Ascophyllum nodosum: dystrybucja i działania związane z wychwytywaniem rodników. Fitochem. Analny. 2010, 21, 399–405. [Odnośnik]
98. Heffernan, N.; Brunton, NP; FitzGerald, RJ; Smyth, TJ Profilowanie masy cząsteczkowej i obfitości izomerów strukturalnych florotannin pochodzących z makroalg. Marzec Narkotyki 2015, 13, 509–528. [Odnośnik]
99. Kirke, DA; Smith, TJ; Rai, Dania; Kenny, O.; Stengel, DB Stabilność chemiczna i przeciwutleniająca izolowanych florotannin o niskiej masie cząsteczkowej. Chemia spożywcza. 2017, 221, 1104–1112. [CrossRef] [PubMed]
100. Zhang, R.; Yuen, AKL; Magnusson, M.; Wright, JT; de Nys, R.; Mistrzowie, AF; Maschmeyer, T. Porównawcza ocena aktywności i struktury florotannin z brązowych wodorostów Carpophyllum flexuosum. Algal Res. 2018, 29, 130–141. [Odnośnik]
101. Allwood, JW; Evans, H.; Austin, C.; McDougall, GJ Ekstrakcja, wzbogacanie i charakterystyka oparta na LC-MSn florotanin i pokrewnych fenoli z brązowych wodorostów, Ascophyllum nodosum. Marzec Narkotyki 2020, 18, 448. [CrossRef]
102. Koivikko, R.; Eränen, JK; Loponen, J.; Jormalainen, V. Zmienność florotanin w trzech populacjach Fucus vesiculosus ujawniona za pomocą HPLC i kolorymetrycznej oceny ilościowej. J. Chem. eko. 2008, 34, 57–64. [Odnośnik]
103. Kirke, DA; Rai, Dania; Smith, TJ; Stengel, DB Ocena zmienności czasowej w profilach florotannin o niskiej masie cząsteczkowej w czterech brązowych makroalgach międzypływowych. Algal Res. 2019, 41, 101550. [Odsyłacz]
104. Parys, S.; Kehraus, S.; Krick, A.; Glombitza, KW; Carmeli S.; Klimo, K.; Gerhauser, C.; König, GM Potencjał chemoprewencyjny in vitro fukofloretoli z alg brunatnych Fucus vesiculosus L. poprzez aktywność przeciwutleniającą i hamowanie wybranych enzymów cytochromu P450. Fitochemia 2010, 71, 221–229. [Odnośnik]
105. Hermund DB; Plaza, M.; Turner, C.; Jónsdóttir, R.; Kristinsson, HG; Jacobsen, C.; Nielsen, KF Zależna od struktury zdolność przeciwutleniająca florotanin z islandzkiego Fucus vesiculosus przez UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS. Chemia spożywcza. 2018, 240, 904–909. [CrossRef] [PubMed]
106. Ovchinnikov, DV; Bogolicyn, KG; Druzhinina, AS; Kaplitsin, Pensylwania; Parszyna, AE; Pikowski, II; Choroszew, OY; Turowa, PN; Stavrianidi, AN; Shpigun, OA Badanie składników polifenoli w ekstraktach z arktycznych alg brunatnych typu Fucus vesiculosus za pomocą chromatografii cieczowej i spektrometrii masowej. J. Analny. chemia 2020, 75, 633–639. [Odnośnik]
107. Kellogg, J.; Łaska, MH; Lila, MA Florotaniny z alaskańskich wodorostów hamują aktywność enzymów karbolitycznych. Marzec Narkotyki 2014, 12, 5277–5294. [CrossRef] [PubMed]
108. Kellogg, J.; Esposito, D.; Łaska, MH; Komarnicki S.; Lila, MA Wodorosty z Alaski zmniejszają stan zapalny w makrofagach RAW 264.7 i zmniejszają gromadzenie się lipidów w adipocytach 3T3-L1. J. Funkcja. Żywność 2015, 15, 396–407. [Odnośnik]
109. Baldrick, FR; McFadden, K.; Ibars, M.; Śpiewane, C.; Moffatt, T.; Megarry, K.; Thomas, K.; Mitchell, P.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; i in. Wpływ ekstraktu bogatego w (poli) fenol z alg brunatnych Ascophyllum nodosum na uszkodzenia DNA i aktywność przeciwutleniającą w populacji z nadwagą lub otyłością: randomizowana, kontrolowana próba. Jestem. J. Clin. Nutr. 2018, 108, 688–700. [Odnośnik]
110. Vázquez-Rodríguez, B.; Gutiérrez-Uribe, JA; Antunes-Ricardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, LE Ekstrakcja wspomagana ultradźwiękami florotanin i polisacharydów z Silvetia compressa (Phaeophyceae). J. Appl. Fikol. 2020, 32, 1441–1453. [Odnośnik]
111. Keusgen, M.; Glombitza, KW Floretole, Fuhalole i ich pochodne z Brown Alga Sargassum spinuligerum. Fitochemia 1995, 38, 975–985. [Odnośnik]
112. Keusgen, M.; Glombitza, KW Pseudofuhalole z Brown Alga Sargassum spinuligerum. Fitochemia 1997, 46, 1403–1415. [Odnośnik]
113. Vijayan, R.; Chitra, L.; Penislusshiyan, S.; Palvannan, T. Exploring Bioactive Fraction of Sargassum wightii: In Vitro Wyjaśnienie inhibicji enzymu konwertującego angiotensynę i i potencjału przeciwutleniającego. Int. J. Food Prop. 2018, 21, 674–684. [Odnośnik]
114. Kord, A.; Foudil-Cherif, Y.; Amiali, M.; Boumechhour, A.; Benfares, skład R. Phlorotannins, zdolność usuwania rodników i siła redukująca fenoli z brązowej algi Cystoseira sauvageauana. J. Aquat. Produkcja żywności Techno. 2021, 30, 426–438. [Odnośnik]
115. Gheda, S.; Naby, MA; Mohamed, T.; Pereira, L.; Khamis, A. Działanie przeciwcukrzycowe i przeciwutleniające florotannin ekstrahowanych z brązowego wodorostów Cystoseira compressa u szczurów z cukrzycą indukowaną streptozotocyną. Otaczać. nauka Zanieczyszczenie. Rez. 2021, 28, 22886–22901. [CrossRef] [PubMed]
116. Trifan, A.; Vasincu, A.; Luca SV; Neophytou, C.; Wolfram, E.; Opitz, SEW; Sawa, D.; Bucur, L.; Cioroiu, BI; Miron, A.; i in. Odkrywanie potencjału wodorostów z rumuńskiego wybrzeża Morza Czarnego jako źródeł związków bioaktywnych. Część I: Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Chemia spożywcza. Toksykol. 2019, 134, 110820. [CrossRef] [PubMed]
117. Gonçalves-Fernández, C.; Sineiro, J.; Moreira, R.; Gualillo, O. Ekstrakcja i charakterystyka frakcji wzbogaconych w florotaninę z atlantyckich wodorostów Bifurcaria bifurcata i ocena ich aktywności cytotoksycznej w mysiej linii komórkowej. J. Appl. Fikol. 2019, 31, 2573–2583. [Odnośnik]
118. Catarino, MD; Alves-Silva, JM; Falcão, SI; Vilas-Boas, M.; Jordão, M.; Cardoso, SM Chromatografia jako narzędzie do identyfikacji związków bioaktywnych w produktach pszczelich pochodzenia botanicznego. W chemii, biologii i potencjalnych zastosowaniach produktów pochodzenia roślinnego pszczół miodnych; Cardoso, SM, Silva, AMS, wyd.; Bentham Science Publishers: Sharjah, Zjednoczone Emiraty Arabskie, 2016; s. 89–149. ISBN9781681082370.
119. Ford, L.; Theodoridou, K.; Sheldrake, GN; Walsh, PJ Krytyczny przegląd metod analitycznych stosowanych do charakteryzacji chemicznej i oznaczania ilościowego związków florotaniny w brązowych wodorostach. Fitochem. Analny. 2019, 30, 587–599. [CrossRef] [PubMed]
120. Isaza Martínez, JH; Torres Castañeda, Przygotowanie HG i analiza chromatograficzna florotannin. J. Chromatograf. nauka 2013, 51, 825–838. [Odnośnik]
121. Rajauria, G. Optymalizacja i walidacja metody HPLC z odwróconymi fazami do jakościowej i ilościowej oceny polifenoli w wodorostach. J. Pharm. Biomed. Analny. 2018, 148, 230–237. [Odnośnik]
122. Kumar, Y.; Singhal, S.; Tarafdar, A.; Faranda, A.; Ganesan, M.; Badgujar, PC Ekstrakcja wspomagana ultradźwiękami wybranych jadalnych makroglonów: wpływ na aktywność przeciwutleniającą i ilościową ocenę polifenoli metodą chromatografii cieczowej z tandemową spektrometrią mas (LC-MS/MS). Algal Res. 2020, 52, 102114. [Odsyłacz]
123. Catarino, DM; Silva, MA; Cardoso, MS Fucaceae: źródło bioaktywnych florotannin. Int. J. Mol. nauka 2017, 18, 1327. [Odsyłacz]
124. Pantidos, N.; Boath, A.; Lund, V.; Conner S.; McDougall, GJ Ekstrakty bogate w fenol z jadalnych wodorostów, Ascophyllum nodosum, hamują -amylazę i -glukozydazę: potencjalne działanie przeciwhiperglikemiczne. J. Funkcja. Żywność 2014, 10, 201–209. [Odnośnik]
125. Karthik, R.; Manigandan, V.; Sheeba, R.; Saravanan, R.; Rajesh, PR Charakterystyka strukturalna i porównawcze właściwości biomedyczne floroglucynolu z indyjskich wodorostów brunatnych. J. Appl. Fikol. 2016, 28, 3561–3573. [Odnośnik]
126. Parys, S.; Kehraus, S.; Piotr.; Kupper, FC; Glombitza, K.-W.; König, GM Sezonowa zmienność polifenoli w Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae). Eur. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [Odnośnik]
127. Shrestha, S.; Zhang, W.; Smid, SD Phlorotannins: przegląd biosyntezy, chemii i bioaktywności. Biologia żywności. 2021, 39, 100832. [Odsyłacz]
128. Erpel, F.; Mateos, R.; Pérez-Jiménez, J.; Pérez-Correa, JR Phlorotannins: od izolacji i charakterystyki strukturalnej do oceny ich potencjału przeciwcukrzycowego i przeciwnowotworowego. Żywność Rez. Int. 2020, 137, 109589. [CrossRef] [PubMed]
129. Jégou, C.; Kervarec, N.; Cérantola, S.; Bihannic, I.; Stiger-Pouvreau, V. NMR Użyj do ilościowego określenia florotannin: przypadek Cystoseira tamariscifolia, brązowej makroalgi produkującej floroglucynol w Bretanii (Francja). Talanta 2015, 135, 1–6. [Odnośnik]
130. Jégou, C.; Culioli, G.; Kervarec, N.; Szymon G.; Metody analityczne Stiger-Pouvreau, V. LC/ESI-MSn i 1H HR-MAS NMR jako przydatne narzędzia taksonomiczne w obrębie rodzaju Cystoseira C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae). Talanta 2010, 83, 613–622. [Odnośnik]
131. Ford, L.; Stratakos, AC; Theodoridou, K.; Dick, JTA; Sheldrake, GN; Linton, M.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Polifenole z brązowych wodorostów jako potencjalny środek przeciwdrobnoustrojowy w paszach dla zwierząt. ACS Omega 2020, 5, 9093–9103. [Odnośnik]
132. Glombitza, KW; Rosener, HU; Müller, D. Bifuhalol Und Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Fitochemia 1975, 14, 1115–1116. [Odnośnik]
133. Jacobsen, C.; Sørensen, A.-DM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, Charakterystyka DB i zastosowania nowych przeciwutleniaczy z wodorostów. rok Wielebny Nauka o Żywności. Techno. 2019, 10, 541–568. [Odnośnik]
134. Mateos, R.; Perez-Correa, JR; Domínguez, H. Bioaktywne właściwości fenoli morskich. Marzec Narkotyki 2020, 18, 501. [CrossRef]
135. Glombitza, KW; Hauperich S.; Keusgen, M. Phlorotannins z alg brunatnych Cystophora torulosa i Sargassum spinuligerum. Nat. Toksyny 1997, 5, 58–63. [Odnośnik]
136. Koch, M.; Glombitza, KW; Rösener, HU Etery polihydroksyfenylowe z Bifurcaria bifurcata. Fitochemia 1981, 20, 1373–1379. [Odnośnik]
137. Cérantola, S.; Breton, F.; Gall, EA; Deslandes, E. Współwystępowanie i działanie przeciwutleniające fukolu i fukofloretolu klas polimerycznych fenoli w Fucus spiralis. Nerw. Marzec 2006, 49, 347–351. [Odnośnik]
138. McInnes, AG; Ragan, MA; Smith, DG; Walter, JA Polifloroglucynole o dużej masie cząsteczkowej morskich alg brunatnych Fucus vesiculosus L. spektroskopia magnetycznego rezonansu jądrowego 1H i 13C. Móc. J. Chem. 1985, 63, 304–313. [Odnośnik]
139. Le Lann, K.; Surget, G.; Couteau, C.; Coiffard, L.; Cérantola, S.; Gaillard, F.; Larnicol, M.; Zubia, M.; Guerard, F.; Poupart, N.; i in. Filtr przeciwsłoneczny, przeciwutleniacz i właściwości bakteriobójcze florotanin z brązowej makroalgi Halidrys siliquosa. J. Appl. Fikol. 2016, 28, 3547–3559. [Odnośnik]
