CZĘŚĆ 2 Zależność regulacyjna między zmiennością jakości a środowiskiem Cistanche Deserticola w trzech ekotypach na podstawie analizy mikrobiomu gleby

KLIKNIJ TUTAJ, ABY CZĘŚĆ 1

Aby uzyskać więcej informacji prosimy o kontakt:Joanna.jia@wecistanche.com

korelacje między liczebnością kluczowych społeczności drobnoustrojów, zawartością PhG i czynnikami ekologicznymi.Przeprowadzono redundantną analizę rdzenia, liczebności mikrobiomu biomarkerów, zawartości PhG i czynników ekologicznych na poziomie zamówienia, a ponowną analizę przeprowadzono na podstawie efektów. Skorygowana interpretacja wariancji wyniosła 82,70 procent (tabela S7). Sphingomonadales wyjaśnił 45,7 procent zawartości PhGs (p=00,002). Pseudonocardiales wyjaśniają 22,4 procent zawartości PhG (p=00,01). 2′-acetylakteozyd był istotnie dodatnio skorelowany z Pseudonocardiales i Oceanospirillales i ujemnie skorelowany z Sphingomonadales (ryc. 5a). Echinakozyd był znacząco dodatni w przypadku Sphingomonadales.

Cistancheekstrakt może zapobiegaćChoroba Alzheimerachoroba

Przeprowadzono analizę korelacji dla liczebności biomarkerów,PhGzawartość (rys. S3 i tabela S5) oraz czynniki ekologiczne (tab. S6). Wyniki sieci korelacji (ryc. 5b) wykazały, że 2′-acetyloakteozyd był istotnie dodatnio skorelowany z Oceanospirillales, Rhizobiales i Thiotrichales, natomiast ujemnie skorelowany z Pseudonocardiales i Nitrosomonadales we wszystkich próbkach gleby. Mapa cieplna (ryc. 5c–e) wykazała, że ​​przy stole A było ujemnie skorelowane ze średnim rocznym ciśnieniem pary wodnej w soli fizjologicznejkorelacje między liczebnością kluczowych społeczności drobnoustrojów, zawartością PhG i czynnikami ekologicznymi.Analiza nadmiarowa rdzenia, liczebności mikrobiomu biomarkerów,PhGszawartość i czynniki ekologiczne przeprowadzono na poziomie zamówienia, a ponowną analizę przeprowadzono na podstawie efektów. Skorygowana interpretacja wariancji wyniosła 82,70 procent (tabela S7). Sphingomonadales wyjaśnił 45,7 procent zawartości PhGs (p=00,002). Pseudonocardiales wyjaśniają 22,4 procent zawartości PhG (p=00,01). 2′-acetylakteozyd był istotnie dodatnio skorelowany z Pseudonocardiales i Oceanospirillales i ujemnie skorelowany z Sphingomonadales (ryc. 5a). Echinakozyd był znacząco dodatni w przypadku Sphingomonadales.

Przeprowadzono analizę korelacji dla biomarkera abun I land. Tymczasem cistanozyd A był istotnie dodatnio skorelowany z Micrococcales i ujemnie skorelowany z Rhizobiales w ziemi solno-alkalicznej (ryc. 5c). Na użytkach zielonych 2′-acetyloakteozyd był ujemnie skorelowany ze średnią roczną temperaturą (ryc. 5d). W gruncie piaszczystym tubulozyd A był ujemnie skorelowany z Nitrosomonadales (ryc. 5e).

predykcyjna funkcja mikrobiomu bakteryjnego w trzech ekotypach C. deserticola.Profile funkcjonalne mikrobiomu bakteryjnego przewidziano na podstawie liczby kopii genu 16S rRNA odszyfrowanych taksonów bakteryjnych przy użyciu Tax4Fun zgodnie z grupami KEGG Ortholog (KOs). Wyniki predykcji funkcjonalnej (rys. 6) wykazały, że funkcjonalne metabolizmy mikrobiomów glebowych w trzech ekotypach C. deserticola były identyczne. Wśród metabolizmów obfite były węglowodany, aminokwasy, kofaktory oraz metabolizmy witamin i energii. Transport błonowy i transdukcja sygnału były również bogate w przetwarzanie informacji o środowisku.

Cistancheekstrakt maprzeciwzapalnynieruchomości

Dyskusja

Nasza poprzednia praca wykazała, że ​​sekwencja psbA-turn i 2'-acetyloakteozyd mogą być wykorzystane jako markery molekularne i chemiczne do rozróżnianiaC. deserticaz Xinjiangu i Mongolii Wewnętrznej27. Dzięki badaniom terenowym odkryliśmy, że C. desertica zamieszkuje głównie trzy typy siedlisk, w tym tereny solankowo-alkaliczne nad jeziorem EbinurLake, tereny piaszczyste wokół Ligi Alexa i pośrednie pustynne łąki. Profile metaboliczne trzech ekotypów C. desertica wykazały również, że 2′-acetyloakteozyd można wykorzystać jako marker chemiczny do rozróżnienia trzech ekotypów1. Omówiliśmy zmienność jakości C. deserticola i mechanizm jej powstawania na podstawie wymiarów dziedziczności, metabolizmu i czynników klimatycznych. Dlatego z perspektywy mikro analiza sieci korelacji

obfitości mikrobiomu,PhGszawartość i czynniki ekologiczne przeprowadzono w celu wyjaśnienia cechy zbiorowiska mikroorganizmów glebowych trzech ekotypówC. deserticolai ich związek ze zmiennością jakości.

woda. Ponadto Bacillalescan wytwarza bogate produkty przemiany materii w celu syntezy różnorodnych kwasów organicznych, enzymów, czynności fizjologicznych i innych substancji, a także wielu innych składników odżywczych, które można łatwo wykorzystać33. Wspólne cechy środowiskowe trzech ekotypów C. deserticolasą susze i pustynnienie gleby. Glebie wokół jeziora Ebinur towarzyszy również stres solankowo-alkaliczny. Może to być przyczyną tego, że podstawowe zbiorowiska drobnoustrojów glebowych trzech ekotypów mają pewne cechy charakterystyczne dla suszy, tolerancji na sól, odporności na alkalia i odporności na stres.

Cistancheekstrakt może się oprzećpromieniowanie

Czynniki mikrobiologiczne wpływające na zmienność PhG w trzech ekotypach C. deserticola.Ryc. S3 przedstawia diagram pudełkowy zawartości PhG w trzech ekotypach C. deserticola. Z wykresu wynika, że ​​zawartość 2′-acetyloakteozydów jest wyższa na gruntach zasolonych i alkalicznych niż na terenach trawiastych i piaszczystych, co jest zgodne z wcześniejszymi wynikami1. Zbędna analiza i wyniki sieci asocjacyjnej pokazują, że Oceanospirillales jest istotnie dodatnio skorelowany z 2'-acetyloakteozydem. Oceanospirillales, najwyższy biomarker pod względem wyniku LDA w glebie solankowo-alkalicznej, został specjalnie wzbogacony. Bakterie te są zróżnicowane metabolicznie i morfologicznie, niektóre z nich mogą rosnąć w obecności tlenu, podczas gdy inne wymagają środowiska beztlenowego34. Oceanospirillales to rząd Proteobacteria obejmujący dwie rodziny. Spirillum morski jest często endosymbiontem robaków kościożernych (Osedax)35. Większość Oceanospirillales preferuje lub wymaga do wzrostu wysokiego stężenia soli. Pomimo wzrostu w różnych niszach, Oceanospirillales czerpią energię z rozpadu różnych produktów organicznych. Dlatego wysokie zasolenie i zasadowość są głównymi przyczynami wzbogacania się Oceanospirillales w glebie słono-alkalicznej. Wynik ten silnie sugeruje, że najwyższa zawartość 2′-acetyloakteozydu w soli fizjologicznej jest związana ze wzbogaceniem Oceanospirillales. Jednak zależność regulacyjna między Oceanospirillales a 2'-acetyloakteozydem jest nadal pusta i potrzebne są dalsze badania.

Ogólna zawartość siedmiu PhG jest najwyższa na użytkach zielonych, wśród których dominującym PhG jest echinakozyd. Echinakozyd jest istotnie dodatnio skorelowany z Sphingomonadales, który jest sekwencją w obrębie alfa-proteus i należy do rodziny Erythrobacteraceae i Sphingomonadaceae. Obie rodziny występują powszechnie w przyrodzie, zwłaszcza w glebach, oceanach i wodach słodkich36. Sphingomonadales mają szeroki zakres zdolności metabolicznych dla związków aromatycznych, a niektóre szczepy mogą syntetyzować cenne biopolimery zewnątrzkomórkowe37. Wszyscy wcześniej znani członkowie klasy Sphingomonas są tlenowi i chemicznie organiczni. Jedynym wyjątkiem jest fakultatywny beztlenowy fermentator etanolu, który służy do produkcji sfermentowanej pulpy do napojów. Niektóre gatunki z rodzaju Rhodobacter, porfiryna i Staphylococcus aureus, a także niektóre gatunki z rodzaju Sphingomonas, mają chlorofil a i dlatego są opcjonalnym fotoorganotrofem (energia wytwarzana przez fotosyntezę)38. Najlepsza jakość C. deserticola na użytkach zielonych może wynikać z bogatej różnorodności zbiorowisk drobnoustrojów i funkcji biomarkera związanych z metabolizmem (Sphingomonadales). To odkrycie dostarcza nowego wglądu w badania nad zmiennością jakości C. deserticola w różnych ekotypach.

Prognozowane profile funkcji metabolicznych mikrobiomów glebowych trzech ekotypów C. deserticola.Profile funkcji metabolicznych (ryc. 6 i plik S1) mikrobiomów glebowych C. deserticola w trzech ekotypach zostały zaprezentowane po raz pierwszy w niniejszych badaniach. Pod względem metabolizmu, metabolizm węglowodanów (metabolizm skrobi i sacharozy,ko00500; metabolizm aminokwasów i cukrów nukleotydów, ko00520) i metabolizm aminokwasów (metabolizm argininy i proliny, ko00330; metabolizm glicyny, seryny i treoniny, ko00260) są wysoce wzbogacone w mikrobiomy. Metabolizm węglowodanów odpowiada za tworzenie, rozkład i konwersję węglowodanów w organizmie. Węglowodany są podstawą wielu ważnych szlaków metabolicznych39. Węglowodany, takie jak glukoza, są częścią wielu szlaków metabolicznych u różnych gatunków. Węglowodany są syntetyzowane przez rośliny z atmosfery na drodze fotosyntezy i mogą być wykorzystywane jako substraty do oddychania komórkowego40. Rośliny i mikroorganizmy pochłaniają ze środowiska amoniak, sól amonową, azotyny, azotany i inny azot nieorganiczny w celu syntezy białek i substancji zawierających azot. Niektóre drobnoustroje mogą przekształcać N2 z powietrza w azot amonowy, syntetyzując aminokwasy41. Funkcja metaboliczna mikrobiomów glebowych została wzbogacona w metabolizm pierwotny. To wzbogacenie sugeruje, że mikrobiomy mogą dostarczać roślinom składników odżywczych i sprzyjać ich wzrostowi w warunkach suszy i innych stresów.

Profile funkcji metabolicznych wykazały również, że w przetwarzaniu informacji o środowisku transport błonowy (transportery ABC, ko02010) i transdukcja sygnału (system dwuskładnikowy, ko02020) są wysoce wzbogacone w mikrobiomy. Transport błonowy to zbiór mechanizmów regulujących przechodzenie substancji rozpuszczonych, takich jak jony i małe cząsteczki, przez biofilm, który jest dwuwarstwą lipidów osadzonych w białkach. Regulacji krzyżujących się membran przypisuje się przepuszczalności membran selektywnych, charakterystycznej dla biofilmów, która umożliwia separację substancji o różnych właściwościach chemicznych. Innymi słowy, błony te mogą być przepuszczalne dla niektórych substancji, ale nie dla innych42. Wśród tych błon szlak transportera ABC był bardzo wzbogacony w mikrobiomy glebowe. Transportery typu ATP-binding box (ABC) są powszechnie stosowane w mikroorganizmach, takich jak bakterie i są jedną z największych znanych obecnie rodzin białek. Transportery te wiążą hydrolizę ATP, aby uczestniczyć w aktywnym transporcie różnorodnych substratów, takich jak jony, peptydy, lipidy, leki, cukry, białka i sterole. Struktura transporterów ABC u prokariontów składa się zwykle z trzech części. Ogólnie, każde z dwóch nienaruszonych białek błonowych ma sześć fragmentów transbłonowych: dwa białka obwodowe, które wiążą i hydrolizują ATP, oraz jeden substrat obwodowy (lub lipoproteinowy) białka wiążącego. Jak zaobserwowano w genomach wielu bakterii i archeonów, wiele genów tych trzech składników tworzy operony43. Susza, zasolenie i stres alkaliczny sprzyjały funkcji transportu błonowego, a zwłaszcza poprawie funkcji aktywnego transportu mikrobiomów glebowych.

Transdukcja sygnału to proces, w którym sygnał chemiczny lub fizyczny jest przesyłany przez komórkę jako seria zdarzeń molekularnych. Najczęstszym jest fosforylacja białek katalizowana przez kinazę białkową. System dwuskładnikowy jest ścieżką sygnalizacyjną, która reguluje wiele cech bakterii, takich jak toksyczność, patogenność, symbioza, ruchliwość, wchłanianie składników odżywczych, wytwarzanie metabolitów wtórnych, regulacja metaboliczna i podział komórek. Systemy te regulują procesy fizjologiczne w oparciu o parametry środowiskowe lub komórkowe, umożliwiając im adaptację do zmieniających się warunków44. Przekaźnictwo sygnału mikrobiomów glebowych było promowane przez suszę lub stres solankowo-alkaliczny.

CistancheWyciąg z puszkiPrzeciwutleniacz

wniosek

Niniejsze badanie jest pierwszym, w którym przedstawiono mikrobiomy glebowe trzech ekotypów C. deserticola. Uzyskano następujące wnioski: (1) zbiorowisko drobnoustrojów glebowych na użytkach zielonych jest najliczniejsze spośród trzech siedlisk. (2) Określono również biomarkery trzech ekotypów: Oceanospirillales (teren słono-zasadowy), Sphingomonadales (użytki zielone) i Propionibacteriales (ląd piaszczysty). (3) Analiza mikrobiomu rdzenia wykazała, że ​​glebowe zbiorowiska drobnoustrojów C. deserticola wykazywały w większości suszę, tolerancję na sól, odporność na alkalia i stres, takie jak Micrococcales i Bacillales. (4) Analiza korelacji wykazała, że ​​2′-acetyloakteozyd jest dodatnio skorelowany z Oceanospirillales, a echinakozyd jest istotnie dodatnio skorelowany z Sphingomonadales. (5) Tax4Fun przewiduje, że profile funkcji metabolicznych trzech ekotypów mikrobiomu glebowego są wzbogacone w metabolizm i przetwarzanie informacji środowiskowych.

Bibliografia

1. Zheng, S., Jiang, X., Wu, L., Wang, Z. & Huang, L. Chemiczna i genetyczna dyskryminacja cistanches herba na podstawie UPLC-QTOF/MS i kodowania kreskowego DNA. Plus jeden 9, e98061 (2014).

2. Li, Z. i in. Modelowanie ekologiczne Cistanche deserticola YC Ma w Alxa, Chiny. Raporty naukowe 9, 13134, https://doi.org/10.1038/s41598-019-48397-6 (2019).

3. Joseph, E. i in. Struktura, zmienność i montaż mikrobiomów korzeniowych ryżu. Materiały Narodowej Akademii Nauk Stanów Zjednoczonych Ameryki 112, E911 (2015).

4. Jansson, JK & Hofmockel, KS Mikrobiom gleby a zmiany klimatyczne. Recenzje przyrody. Mikrobiologia, https://doi.org/10.1038/s41579-019-0265-7 (2019).

5. Wang, X. i in. Porównanie profili chemicznych i aktywności przeciwutleniających różnych części hodowanych Cistanche deserticola przy użyciu ultrasprawnej chromatografii cieczowej z kwadrupolową spektrometrią mas czasu przelotu i testu opartego na 1,{5}}difenylu-2-pikrylohydrazylu. Cząsteczki 22, 2011 (2017).

6. Yang, L. i in. Korzystny wpływ całkowitej frakcji glikozydów fenyloetanoidowych wyizolowanej z Cistanche deserticola na mikrostrukturę kości u szczurów z wyciętymi jajnikami. Medycyna oksydacyjna i długowieczność komórkowa 2019, 2370862, https://doi. org/10.1155/2019/2370862 (2019).

7. Liu, W. i in. Od opartej na (1)H NMR nieukierunkowanej strategii metabolomicznej opartej na LC-MS do dogłębnych porównań rumianku między czterema gatunkami Cistanche. Journal of Pharmaceutical and Biomedical analysis 162, 16–27, https://doi.org/10.1016/j. jpba.2018.09.013 (2019).

8. Chen, H. i in. Rdzeń mikrobiomu nasion roślin leczniczych Salvia miltiorrhiza: bogaty rezerwuar pożytecznych drobnoustrojów dla wtórnego metabolizmu? International Journal of Molecular Sciences 19, 672 (2018).

9. Sonnenburg, JL & Backhed, F. Interakcje dieta-mikrobiota jako moderatory metabolizmu człowieka. Natura 535, 56–64, https://doi. org/10.1038/nature18846 (2016).

10. Ju, F. & Zhang, T. 16S rRNA genu wysokoprzepustowego sekwencjonowania danych eksploracja różnorodności i interakcji drobnoustrojów. Mikrobiologia stosowana i biotechnologia 99, 4119–4129 (2015).

11. Cui, J.-L., Vijayakumar, V. & Zhang, G. Podział zespołów endofitów grzybowych w roślinie pasożytniczej korzeni Cynomorium songaricum i jej żywicielu Nitraria tangutorum. Granice w mikrobiologii 9, 666 (2018).

12. Fan, P., Liu, P., Song, P., Chen, X. & Ma, X. Umiarkowane ograniczenie białka w diecie zmienia skład mikroflory jelitowej i poprawia funkcję bariery jelitowej w modelu dorosłej świni. Raporty naukowe 7, 43412 (2017).

13. Munyaka, PM i in. Prenatalne leczenie antybiotykami Mo1774 zwiększa podatność potomstwa na eksperymentalne zapalenie jelita grubego: rola mikroflory jelitowej. Plus jeden 10, e0142536 (2015).

14. Zhao, Y. i in. Wpływ intensywności mieszania na wydajność i dynamikę mikrobiologiczną pojedynczego pionowego reaktora integrującego fazy kwasogenną i metanogenną w fermentacji biomasy lignocelulozowej. Technologia biozasobów 238, 542–551 (2017).

15. Cole, JR i in. Projekt bazy danych rybosomów: ulepszone dopasowania i nowe narzędzia do analizy rRNA. (2009).

16. Edgar, RC UPARSE: bardzo dokładne sekwencje OTU z odczytów amplikonu drobnoustrojów. Metody natury 10, 996 (2013).

17. Yu, W. i in. Porównanie poziomów różnorodności bakteryjnej w wodach słodkich, pływowych terenach podmokłych i osadach morskich przy użyciu milionów znaczników Illumina. Mikrobiologia stosowana i środowiskowa 78, 8264 (2012).

18. Jiang, XT i in. Sekwencjonowanie iluminacji znacznika 16S rRNA ujawniło zmienność przestrzenną społeczności bakteryjnych na mokradłach namorzynowych. Ekologia drobnoustrojów 66, 96-104 (2013).

19. Sanner, MF Python: język programowania do integracji i rozwoju oprogramowania. Journal of Molecular Graphics & Modeling

17, 57–61 (1999).

20. Caporaso, JG i in. QIIME umożliwia analizę danych sekwencjonowania społeczności o wysokiej przepustowości. Metody Nat 7, 335–336, https://doi. org/10.1038/nmeth.f.303 (2010).

21. Chong, J., Liu, P., Zhou, G. i Xia, J. Using MicrobiomeAnalyst do kompleksowej statystycznej, funkcjonalnej i metaanalizy danych mikrobiomu. Protokoły natury, 1-23 (2020).

22. Dhariwal, A. i in. MicrobiomeAnalyst: internetowe narzędzie do kompleksowej analizy statystycznej, wizualnej i metaanalizy danych mikrobiomu. Badania kwasów nukleinowych 45, W180–W188 (2017).

23. Šmilauer, P. & Lepš, J. Wielowymiarowa analiza danych ekologicznych przy użyciu CANOCO 5. (Cambridge University Press (2014).

24. Shannon, P. i in. Cytoscape: środowisko oprogramowania dla zintegrowanych modeli sieci interakcji biomolekularnych. Badania genomu 13, 2498–2504 (2003).

25. Asshauer, KP, Wemheuer, B., Daniel, R. & Meinicke, P. Tax4Fun: przewidywanie profili funkcjonalnych na podstawie metagenomicznych danych 16S rRNA. Bioinformatyka (Oxford, Anglia) 31, 2882–2884, https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btv287 (2015).

26. Koo, H. i in. Porównanie dwóch narzędzi bioinformatycznych użytych do scharakteryzowania różnorodności mikrobiologicznej i predykcyjnych cech funkcjonalnych mat mikrobiologicznych z jeziora Obersee na Antarktydzie. Czasopismo metod mikrobiologicznych 140, 15-22 (2017).

27. Huang, L., Zheng, S., Wu, L., Jiang, X. & Chen, S. Ekotypy Cistanche deserticola na podstawie składu chemicznego i cech molekularnych. Scientia Sinica Vitae 44, 318-328 (2014).

28. Gabriele, B. i Kornelia, S. Gatunki roślin i typ gleby wspólnie kształtują strukturę i funkcję zbiorowisk drobnoustrojów w ryzosferze. Fems Microbiology Ecology 68, 1–13 (2010).

29. Parte, AC LPSN – wykaz nazw prokariotycznych, które mają status w nomenklaturze. Badania nad kwasami nukleinowymi 42, 613–616 (2014).

30. Pirog, T., Grinberg, T. & Malashenko, YR Funkcje ochronne egzopolisacharydów wytwarzanych przez Acinetobacter sp. Mikrobiologia (Nowy Jork, NY) 66, 279–283 (1997).

31. Liu, Y.-H. i in. Różnorodność, dystrybucja społeczności i działania promujące wzrost endofitów związanych z halofitem Lycium ruthenicum Murr. 3 Biotech 9, 144 (2019).

32. Staley, Bryant, Pfennig, Holt i JG Bergey's Manual of Systematic Bacteriology - tom 4. Bergeys Manual of Systematic Bacteriology 38, 89-100 (1989).

33. Pasqua, RD i in. Wpływ różnych źródeł lignocelulozy na ekspresję genu endo-1,4- -glukanazy i aktywność enzymatyczną Bacillus amyloliquefaciens B31C. Biozasoby 9 (2014).

34. Pot, B. i Gillis, M. Oceanospirillum. (2015).

35. Euzeby, JP Lista nazw bakteryjnych ze statusem w nomenklaturze: folder dostępny w Internecie. Międzynarodowe czasopismo systematycznej bakteriologii 47, 590–592, https://doi.org/10.1099/00207713-47-2-590 (1997).

36. Balkwill, DL, Fredrickson, JK & Romine, MF Sphingomonas and Related Genera. Prokarionty 7, 605–629 (2003).

37. Takeuchi, M., Hamana, K. i Hiraishi, A. Propozycja rodzaju Sphingomonas sensu stricto i trzech nowych rodzajów, Sphingobium, Novosphingobium i Sfingopyxis, na podstawie analiz filogenetycznych i chemotaksonomicznych. International Journal of Systematic & Evolutionary Microbiology 51, 1405-1417 (2001).

38. Saori, S. & Akira, H. Novosphingobium naphthalenivorans sp. nov., bakteria rozkładająca naftalen wyizolowana ze środowisk skażonych polichlorowanymi dioksynami. Journal of General & Applied Microbiology 53, 221-228 (2007).

39. Alánt, O., Pulay, I., Esztergályos, J. & Bodnár, A. Wpływ operacji na metabolizm węglowodanów. Acta Chirurgica Academiae Scientiarum Hungaricae 16, 307 (1975).

40. Szary, trawienie i wchłanianie węglowodanów GM. Encyklopedia Gastroenterologii 58, 275–278 (2004).

41. Coon, MJ i Robinson, WG Metabolizm aminokwasów. (2003).

42. Purves, WK, Orians, G., Heller, C., Sadava, D. Vida, LaCiencia de la Biología. Wydanie 8ª. Panamericana (2009).

43. Schneider, E. & Hunke, S. Systemy transportu kasety wiążącej ATP (ABC): funkcjonalne i strukturalne aspekty podjednostek/domen hydrolizujących ATP. Fems Microbiology Recenzje 22, 1-20 (1998).

44. Kleerebezem, M., Quadri, LE, Kuipers, OP i Vos, WM De. Wykrywanie kworum za pomocą feromonów peptydowych i dwuskładnikowych systemów transdukcji sygnału w bakteriach Gram-dodatnich. Mikrobiologia molekularna 24, 895-904 (2010).