8. Wnioski

Cząsteczki pochodzenia naturalnego są tradycyjnie stosowane w produktach do ochrony skóry (Tabela 1, wykaz CosIng). W konsekwencji naturalne związki wyizolowane i/lub wytworzone przy użyciu narzędzi biotechnologicznych z mikroorganizmów są już wykorzystywane do celów dermatologicznych w preparatach kosmetycznych do stosowania miejscowego. Produkty te mogą estetycznie poprawić wygląd skóry, ale mogą również zapobiegać i/lub leczyć choroby skóry związane z wiekiem. Poza „ustalonymi” cząsteczkami istnieje kilka małych cząsteczek i/lub enzymów pochodzących z mikroorganizmów, które mają ogromny potencjał do zastosowania w kosmetykach lub preparatach kosmeceutycznych (Tabela 1).

Według odpowiednich badań cistanche jest pospolitym ziołem znanym jako „cudowne zioło, które przedłuża życie”. Jego głównym składnikiem jestcistanozyd, który ma różne efekty, takie jakprzeciwutleniacz, przeciwzapalny, Ipromocja funkcji odpornościowych. Mechanizm między cistanche askórabieleniepolega na działaniu przeciwutleniającym cistancheglikozydy. Melanina w ludzkiej skórze jest wytwarzana przez utlenianie tyrozyny katalizowane przeztyrozynaza, a reakcja utleniania wymaga udziału tlenu, więc wolne rodniki tlenowe w organizmie stają się ważnym czynnikiem wpływającym na produkcję melaniny. Cistanche zawiera cistanozyd, który jest przeciwutleniaczem i może w ten sposób zmniejszać wytwarzanie wolnych rodników w organizmiehamowaniemelaninaprodukcja.

Kliknij Cistanche Powder Bulk

Po więcej informacji:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Co ciekawe, kilka biomolekuł, które już znajdują się w Europejskim Wykazie Akceptowanych Składników Kosmetycznych (CosIng Inventory) [14], jest zarejestrowanych ze względu na jedną z ich aktywności biologicznych, ale są wykorzystywane w różny sposób w zastosowaniach kosmetycznych. Charakterystycznym przykładem jest kwas kojowy, który jest zarejestrowany jako „przeciwutleniacz”, natomiast głównym zastosowaniem w kosmetyce jest jego silne działanie antytyrozynazowe, a co za tym idzie jego zastosowanie jako środka wybielającego skórę (tab. 1).

Biorąc pod uwagę ogromną różnorodność biologiczną drobnoustrojów i ich adaptację do praktycznie każdego środowiska na ziemi, należy się spodziewać, że drobnoustroje stanowią niezwykły zbiór wysoce zróżnicowanych rusztowań strukturalnych biomolekuł o potencjalnym działaniu ochronnym dla skóry. Chociaż badania nad środowiskiem morskim zaczęły dopasowywać się później niż w środowisku lądowym, mamy kilka przypadków, w których zastosowania kosmetyczne i patenty sprzyjają mikroorganizmom pochodzenia morskiego. Jak wspomniano w przypadku MAA znanych ze swojego działania fotoochronnego, są one zawarte w kilku patentach na naturalne filtry UV. Jednak większość z nich została opracowana z mikroorganizmami ze środowisk morskich (72,2 proc.), podczas gdy patenty opracowane na mikroorganizmach lądowych i słodkowodnych nie przekroczyły odpowiednio 21,4 proc. i 2,4 proc. [135]. Badanie to odzwierciedla fakt, że do tej pory w niektórych przypadkach zaniedbywano środowisko lądowe.

Konflikt interesów:Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Skróty

UVB ultrafiolet B

Bibliografia

1. Ma, T.; Deng, Z.; Liu, T. Mikrobiologiczne strategie produkcji i zastosowania likopenu i innych terpenoidów. Świat J. Microbiol. Biotechnologia. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; Barone, G.; Marcellini, F.; Dell’Anno, A.; Danovaro, R. Marine Cząsteczki pochodzenia mikrobiologicznego i ich potencjalne zastosowanie w kosmeceutykach i produktach kosmetycznych. Marzec Narkotyki 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Łobanowska, M.; Pilla, odkrycie G. Penicyliny i oporność na antybiotyki: lekcje na przyszłość? J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.

4. Raja, A.; Prabakarana, P. Actinomycetes i przegląd leków. Jestem. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [Odnośnik]

5. Berdy, J. Bioaktywne metabolity drobnoustrojów. J. Antybiot. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. Ferreira, A.; Vecino X.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, AB; Rodrigues, LR Nowe preparaty kosmetyczne zawierające biosurfaktant z Lactobacillus paracasei. Surfowanie po koloidach. B Biointerfejsy 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Argyropoulou, A.; Aligiannis, N.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL Naturalne związki o działaniu przeciwstarzeniowym. Nat. Szturchać. Rep. 2013, 30, 1412–1437. [Odnośnik]

8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. Mechanizmy molekularne starzenia się fibroblastów skóry wywołanego promieniowaniem UVB i jego znaczenie dla fotostarzenia się skóry ludzkiej. Do potęgi. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. Celowanie w starzejące się komórki: możliwe implikacje opóźniania starzenia się skóry: mini-przegląd. Gerontologia 2016, 62, 513–518.

10. Trougakos, IP; Sesti, F.; Tsakiri, E.; Gorgoulis, VG Nieenzymatyczne potranslacyjne modyfikacje białek i deregulacja sieci proteostazy w karcynogenezie. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.

11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; Fokialakis, N.; Trougakos, IP Chemoprewencja raka poprzez aktywację modułów proteostatycznych. Rak Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. Raporty z badania rynku. (dostęp 22 sierpnia 2017 r.).

13. Hyde, KD; Bahkali, AH; Muzułmanin, MA Grzyby — Niezwykłe źródło kosmetyków. nurkowie grzybów. 2010, 43, 1–9. [Odnośnik]

14. Spis Cosingu. Dostępne w Internecie: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (dostęp: 22 marca 2018 r.).

15. Chai, TT; Prawo, YC; Wong, FC; Kim, SK Wspomagane enzymami odkrycie peptydów przeciwutleniających z jadalnych bezkręgowców morskich: przegląd. Marzec Narkotyki 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG Mitochondria ssaków i starzenie się: aktualizacja. Komórka. Metab. 2017, 25, 57–71. [Odnośnik]

17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. Naturalne przeciwutleniacze w kosmetykach. Stadnina. Nat. Szturchać. chemia 2013, 40, 485–505.

18. Abramowicz, H.; Grobin, B.; Ulrich, NP; Cigi´c, B. Znaczenie i standaryzacja testów antyoksydacyjnych in vitro: ABTS, DPPH i Folin – Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [Odnośnik]

19. Huang, WY; Cai, YZ; Xing, J. Potencjalne źródło przeciwutleniaczy: grzyby endofityczne z roślin leczniczych. Ekon. Nerw. 2007, 61, 14–30. [Odnośnik]

20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, T.; Hulikere, MM; Appaiah, KAA Profilowanie molekularne i przeciwutleniacz, a także potencjał przeciwbakteryjny endofitycznego grzyba wytwarzającego polifenole - Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Mykologia 2017, 8, 28–38. [Odnośnik]

21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV Właściwości przeciwutleniające Spiruliny (Arthospira) platensis uprawianej w różnych temperaturach i reżimach azotowych. Braz. Łuk. Biol. Techno. 2007, 50, 161–167. [Odnośnik]

22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Aktywność przeciwutleniająca mikroalgi Chlorella vulgaris hodowanej w specjalnych warunkach. Torebka. Chim. Gospodarstwo rolne. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, Hiszpania; Shanab, SMM Działanie przeciwrodnikowe i przeciwutleniające różnych ekstraktów Spirulina platensis przeciwko testom rodników DPPH i ABTS. Indyjski J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [Odnośnik]

24. Goiris, K.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; Noten, B.; De Paepe, D.; GJ, B.; De Cooman, L. Wykrywanie flawonoidów w mikroalgach z różnych linii ewolucyjnych. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [Odnośnik]

25. Jerez-Martel, I.; García-Poza, S.; Rodríguez-Martel, G.; Rico, M.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Profil fenolowy i aktywność przeciwutleniająca surowych ekstraktów ze szczepów mikroalg i sinic. J. Jakość żywności. 2017, 4, 1–8. [Odnośnik]

26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Właściwości przeciwutleniające i zawartość polifenoli w sinicach lądowych. 3 Biotechnologia. 2017. [Odsyłacz]

27. Liu, Y.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, H.; Zhang, D.; Han, X. Izolacja i identyfikacja endofitów wytwarzających resweratrol z winogron Cabernet Sauvignon. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Shi, J.; Zeng, Q.; Liu, Y.; Pan, Z. Alternaria sp. MG1, grzyb wytwarzający resweratrol: izolacja, identyfikacja i optymalne warunki uprawy do produkcji resweratrolu. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA Przeciwstarzeniowe właściwości resweratrolu: przegląd i raport o silnym nowym preparacie przeciwutleniającym do pielęgnacji skóry. J. Kosmet. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Y. Biokonwersja resweratrolu przy użyciu komórek spoczynkowych niezmodyfikowanych genetycznie Alternaria sp. Biotechnologia. Aplikacja Biochem. 2013, 60, 236–243. [Odnośnik]

31. An, SM; Ko, JS; Boo, YC Kwas p-kumarowy nie tylko hamuje aktywność ludzkiej tyrozynazy in vitro, ale także melanogenezę w komórkach narażonych na promieniowanie UVB. Fitoteria. Rez. 2010, 24, 1175–1180.

32. Lourit, N.; Kanlayavattanakul, M. Aktywność przeciwutleniająca i fenole nasion Passiflflora edulis odzyskanych z pozostałości po produkcji soku. J. Oleo. nauka 2013, 62, 235–240. [Odnośnik]

33. Lopez-Burillo, S.; Jasnobrązowy, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, Karolina Południowa; Reiter, RJ Melatonina, kwas ksanturenowy, resweratrol, EGCG, witamina C i kwas alfa-liponowy w różny sposób zmniejszają oksydacyjne uszkodzenia DNA wywołane przez odczynniki Fentona: badanie ich indywidualnych i synergistycznych działań. J. Szyszynka. Rez. 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]

34. Satooka, H.; Kubo, I. Resweratrol jako inhibitor typu kcat dla tyrozynazy: Potencjalny inhibitor melanogenezy. Bioorg. Med. chemia 2012, 20, 1090–1099. [Odnośnik]

35. Li, M.; Kildegaard, KR; Chen, Y.; Rodriguez, A.; Borodina, I.; Nielsen, J. De novo produkcja resweratrolu z glukozy lub etanolu przez inżynierię Saccharomyces cerevisiae. Metab. inż. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. Lim, CG; Fowler, ZL; Hueller, T.; Schaeffer, S.; Koffffas, MA Wysokowydajna produkcja resweratrolu w inżynierii Escherichia coli. Aplikacja Otaczać. Mikrobiol. 2011, 77, 3451–3460. [Odnośnik]

37. Sydor, T.; Schaeffer, S.; Boles, E. Znaczny wzrost produkcji resweratrolu przez rekombinowane przemysłowe szczepy drożdży przy użyciu bogatej pożywki. Aplikacja Otaczać. Mikrobiol. 2010, 76, 3361–3363. [Odnośnik]

38. Balestrazzi, A.; Bonadei, M.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Bakterie związane z liśćmi z transgenicznej topoli białej wytwarzającej związki podobne do resweratrolu: izolacja, charakterystyka molekularna i ocena tolerancji na stres oksydacyjny. Móc. J. Mikrobiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; Zhang, Q.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, AL; Gao, J.-M. Wtórne metabolity endofitycznej Botryosphaeria dothidea Melia azedarach i ich działanie przeciwgrzybicze, przeciwbakteryjne, przeciwutleniające i cytotoksyczne. J. Agric. Chemia spożywcza. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. Mou, Y.; Meng, J.; Fu, X.; Wang, X.; Tian, ​​J.; Wang, M.; Peng, Y.; Zhou, L. Aktywność przeciwdrobnoustrojowa i przeciwutleniająca oraz wpływ dodatku 1-heksadecenu na plon palmarumycyny C2 i C3 w płynnej hodowli grzyba endofitycznego Berkleasmium sp. Dzf12. Cząsteczki 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. Przeciwutleniająca rola suplementów glutationu i N-acetylocysteiny oraz stres oksydacyjny wywołany wysiłkiem fizycznym. J. Int. soc. Sport Nutr. 2005, 2, 38–44. [Odnośnik]

42. Sonthalia S.; Daulatabad, D.; Sarkar, R. Glutation jako środek wybielający skórę: fakty, mity, dowody i kontrowersje. Indyjski J. Dermatol. Wenerol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [Odnośnik]

43. Fei, L.; Wang, Y.; Chen, S. Ulepszona produkcja glutationu przez ekspresję genów w Pichia pastoris. Bioproces. Biosyst. inż. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]

44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, H.; Li, Z.; Ye, Q. Heterologiczna ekspresja genu gshF w różnych systemach wektorowych w Escherichia coli w celu zwiększenia produkcji glutationu. J. Biotechnologia. 2015, 214, 63–68. [Odnośnik]

45. Palozza, P.; Krinsky, NI Astaksantyna i kantaksantyna są silnymi przeciwutleniaczami w modelu membranowym. Łuk. Biochem. Biofiza. 1992, 267, 291–295. [Odsyłacz] 46. Yamamoto, K.; Hara, Kentucky; Morita, T.; Nishimura, A.; Sasaki, D.; Ishii, J. Wzmocnienie produkcji astaksantyny w Xanthophyllomyces dendrorhous skuteczną metodą całkowitej delecji genów. Mikrob. Fakt komórkowy. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA Wpływ warunków hodowli na wzrost zielenic - Haematococcus pluvialis i produkcję astaksantyny. Acta Physiol. Zakład. 2002, 24, 323–329. [Odnośnik]

48. Mueller, L.; Boehm, V. Aktywność przeciwutleniająca związków beta-karotenu w różnych testach in vitro. Cząsteczki 2011, 16, 1055–1069. [Odnośnik]

49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, X.; Hu, M.; Deng, Z. Ukierunkowana inżynieria i zwiększenie skali nadprodukcji likopenu w Escherichia coli. Proces. Biochem. 2015, 50, 341–346. [Odnośnik]

50. Nelis, HJ; De Leenheer, AP, Reinvestigation of Brevibacterium sp. szczep KY-4313 jako źródło kantaksantyny. Aplikacja Otaczać. Mikrobiol. 1989, 55, 2505–2510.

51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. Aktywność przeciwutleniająca luteiny karotenoidowej in vitro i in vivo. Indian J. Exp. Biol. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodríguez, H.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG Zawartość karotenoidów w mikroalgach chlorofitowych: czynniki determinujące akumulację luteiny w Muriellopsis sp. (Chlorofity). J. Biotechnologia. 2000, 76, 51–59. [Odnośnik]

53. Venugopalan, V.; Tripathi, SK; Nahar, P.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Charakterystyka izomerów kantaksantyny wyizolowanych z nowej gleby Dietzia sp. i ich działanie przeciwutleniające. J. Mikrobiol. Biotechnologia. 2013, 23, 237–245. [Odnośnik]

54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Ocena siły działania przeciwutleniającego in vitro egzopolisacharydu z endofitycznego Fusarium solani SD5. Int. J. Biol. makromol. 2013, 53, 62–66. [Odnośnik]

55. Zheng, LP; Zou, T.; Ma, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ Antyoksydacyjna i chroniąca przed uszkodzeniem DNA aktywność egzopolisacharydów z endofitycznej bakterii Bacillus cereus SZ1. Cząsteczki 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Liu, J.; Luo, J.; Tak, H.; Słońce, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Produkcja, charakterystyka i aktywność przeciwutleniająca in vitro egzopolisacharydów z bakterii endofitycznych Paenibacillus polymyxa EJS -3. Węglowodany. Polim. 2009, 78, 275–281. [Odnośnik]

57. Liu, J.; Luo, J.; Tak, H.; Słońce, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Optymalizacja podłoża i charakterystyka strukturalna egzopolisacharydów z bakterii endofitycznych Paenibacillus polymyxa EJS -3. Węglowodany. Polim. 2010, 79, 206–213. [Odnośnik]

58. Xiao, R.; Zheng, Y. Przegląd mikroalgowych zewnątrzkomórkowych substancji polimerowych (EPS) i ich zastosowań. Biotechnologia. adw. 2016, 34, 1225–1244. [Odnośnik]

59. Chen, Y.; Mao, W.; Tao, H.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Charakterystyka strukturalna i właściwości przeciwutleniające egzopolisacharydu wytwarzanego przez endofityczny grzyb namorzynowy Aspergillus sp. Y16. Biosurowiec. Techno. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; Sassaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, FO; Gorin, Pensylwania; Iacomini, M. Warunki hodowli do produkcji kwaśnego egzopolisacharydu przez bakterię wiążącą azot Burkholderia tropica. Móc. J. Mikrobiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. Trabelsi, L.; Chaieb, O.; Mnari, A.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. Częściowa charakterystyka i działanie przeciwutleniające i antyproliferacyjne wodnych pozakomórkowych polisacharydów z termofilnych mikroalg Graesiella sp. Uzupełnienie BMC. zastępca. Med. 2016. [Odnośnik]

62. Romay, C.; Gonzalez R.; Ledon, N.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-fikocyjanina: biliproteina o działaniu przeciwutleniającym, przeciwzapalnym i neuroprotekcyjnym. bież. Peptyd Białkowy nauka 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. Tasar, OC; Erdal, S.; Taskin, M. Produkcja chitozanu przez psychrotolerant Rhizopus oryzae w niesterylnych warunkach otwartej fermentacji. Int. J. Biol. makromol. 2016, 89, 428–433. [Odnośnik]

64. Asachi, R.; Karimi, K. Zwiększona produkcja etanolu i chitozanu ze słomy pszennej przez Mucor indicus przy minimalnym zużyciu składników odżywczych. Proces. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [Odnośnik]

65. Logesh AR; Thillaimaharani, KA; Sharmila, K.; Kalaiselvam, M.; Raffiffiffi, SM Produkcja chitozanu z grzybów endolitycznych wyizolowanych ze środowiska namorzynowego i jego antagonistyczne działanie. Azjatycki Pac. J.Trop. Biomed. 2012, 2, 140–143. [Odnośnik]

66. Ordonñez, L.; Garcia, J.; Bolanños, G. Wytwarzanie chityny i kompleksów chityna-glukan z biomasy Aspergillus niger przy użyciu wody podkrytycznej. W Proceedings of the Ibero-American Conference on Supercritical Fluids, Cartagena, Kolumbia, 1–5 kwietnia 2013 r.

67. Guo, J.; Rao, Z.; Yang, T.; Człowiek, Z .; Xu, M.; Zhang, X. Produkcja melaniny na wysokim poziomie przez nowy izolat Streptomyces kathirae. Mikrobiol FEMS. Łotysz. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. Tarangini, K.; Mishra, S. Produkcja melaniny przez izolat drobnoustrojów glebowych na ekstrakcie z odpadów owocowych: dwuetapowa optymalizacja kluczowych parametrów. Biotechnologia. Rep. 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. Beckstead, AA; Zhang, Y.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, E.; Foreman, CM Ultraszybka dezaktywacja w stanie wzbudzonym bakteryjnego pigmentu violaceiny. J. Fiz. chemia 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. Ahmad, Waszyngton; Yusof, Nowa Zelandia; Nordin, N.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Produkcja i charakterystyka violaceiny przez lokalnie wyizolowane Chromobacterium violaceum hodowane w odpadach rolniczych. Aplikacja Biochem. Biotechnologia. 2012, 167, 1220–1234. [Odnośnik]

71. Wang, H.; Jiang, P.; Lu, Y.; Ruan, Z.; Jiang, R.; Xing, X.-H. Optymalizacja warunków hodowli do produkcji violaceiny przez nowy szczep Duganella sp. B2. Biochem. inż. J. 2009, 44, 119–124. [Odnośnik]

72. Pathak, J.; Sonker, AS; Richa R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Badania przesiewowe i częściowe oczyszczanie pigmentu fotoochronnego scytoneminy ze skorup sinic żyjących na zabytkach historycznych w Varanasi i okolicach w Indiach. Mikrobiol. Rez. 2017. [Odsyłacz]

73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; On, S.; Yan, X. Oznaczanie utlenionej scytoneminy w gminie Nostoc Vauch hodowanej w różnych warunkach metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej sprzężonej ze spektrometrią mas z potrójnym kwadrupolem. J. Appl. Fikol. 2013, 25, 1001–1007. [Odnośnik]

74. Nakashima, T.; Anzai, K.; Kuwahara, N.; Komaki, H.; Miyadoh, S.; Harayama, S. Fizykochemiczne właściwości inhibitora tyrozynazy wytwarzanego przez Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. Biol. Farmacja. Byk. 2009, 32, 832–836. [Odnośnik]

75. Kurbanoglu, EB; Ozdal, M.; Ozdal, OG; Algur, OF Zwiększona produkcja prodigiozyny przez Serratia marcescens MO-1 przy użyciu peptonu z rogu barana. Braz. J. Mikrobiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. Boric, M.; Danevcic, T.; Stopar, D. Prodigiosin z Vibrio sp. DSM 14379; nowy pigment chroniący przed promieniowaniem UV. Mikrob. eko. 2011, 62, 528–536. [Odnośnik]

77. Lawrence, KP; Gacesa, R.; Długie, PF; Young, AR Fotoprotekcja molekularna ludzkich keratynocytów in vitro przez naturalnie występujący polietylen podobny do mykosporyny. br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [Odnośnik]

78. Rastogi, RP; Incharoensakdi, A. Charakterystyka związków przesiewowych UV, aminokwasów podobnych do mykosporyny i scytoneminy w cyjanobakterii Lyngbya sp. CU2555. Mikrobiol FEMS. eko. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. Libkind, D.; Moline, M.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, M. Dystrybucja filogenetyczna grzybowej cyklosporyny w Pucciniomycotina (Basidiomycota). Drożdże (Chichester, Anglia) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

80. Kogej, T.; Gostincar, C.; Volkmann, M.; Gorbuszyna, AA; Gunde-Cimerman, N.; Kogej, T.; Gorbushina, AA Mykosporyny w grzybach ekstremofilnych - Nowe komplementarne osmolity? Otaczać. chemia 2006, 3, 105–110. [Odnośnik]

81. Wei, S.; Xu, N.; Ji, Z. Identyfikacja kwasu kojowego wytwarzającego Aspergillus afflatus F52. Acta Microbiol. Grzech. 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA Badania uwarunkowań kulturowych produkcji kwasu kojowego przez Aspergillus parasiticus. Int. J. Agric. Biol. 2006, 8, 468–473.

83. Mohamad, R.; Ariffff, AB Biotransformacja różnych źródeł węgla do kwasu kojowego przez związany z komórką układ enzymatyczny A. afflatus Link 44-1. Biochem. inż. J. 2007, 35, 203–209. [Odnośnik]

84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Wielofunkcyjny środek chroniący skórę przed promieniowaniem UV, (3R)-5-hydroksymelleina, wytwarzana przez endolityczny grzyb wyizolowany z Parmotrema austrosinense. Cząsteczki 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Robledo, A.; Aguilera-Carbo, A.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Y.; Aguilar, CN Produkcja kwasu elagowego przez Aspergillus niger w fermentacji w stanie stałym pozostałości granatu. J. Ind. Microbiol. Biotechnologia. 2008, 35, 507–513. [Odnośnik]

86. Smith, WP Wpływ miejscowego kwasu mlekowego L (plus) i kwasu askorbinowego na wybielanie skóry. Int. J. Kosmet. nauka 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Metabolizm ksylozy w grzybie Rhizopus oryzae: wpływ wzrostu i oddychania na produkcję L plus kwasu mlekowego. J. Ind. Microbiol. Biotechnologia. 2008, 35, 569–578. [Odnośnik]

88. Shih, Illinois; Van, YT Produkcja poli-(kwasu gamma-glutaminowego) z mikroorganizmów i różne zastosowania. Biosurowiec. Techno. 2001, 79, 207–225. [Odnośnik]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW Możliwy mechanizm działania kwasu azelainowego w ludzkim naskórku. Łuk. Dermatol. Rez. 1990, 282, 168–171. [Odnośnik]

90. Balina, LM; Graupe, K. Leczenie melasmy to 20% kwas azelainowy w porównaniu z 4% kremem hydrochinonowym. Int. J. Dermatol. 1991, 30, 893–895. [Odnośnik]

91. Nazzaro-Porro, M.; Pasi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Identyfikacja inhibitorów tyrozynazy w kulturach Pityrosporum i ich działanie melanocytotoksyczne. Pigment. Komórka 1979, 4, 234–243.

92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. Katalizowana enzymatycznie synteza bursztynianu witaminy E przy użyciu chemicznie zmodyfikowanego nikt-435. Podbródek. J. Chem. inż. 2011, 19, 135–139. [Odnośnik]

93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Badania porównawcze izolacji błonowego kwasu lipotejchojowego z fermentu Lactobacillus. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.

94. Tokiwa, Y.; Kitagawa, M.; Raku, T. Enzymatyczna synteza estru kwasu undecylenowego arbutyny i jego hamujący wpływ na tyrozynazę grzybową. Biotechnologia. Łotysz. 2007, 29, 481–486. [Odnośnik]

95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, U.; Frisvad, JC Identyfikacja potencjalnie bezpiecznych, obiecujących fabryk komórek grzybowych do produkcji naturalnych barwników spożywczych poliketydów przy użyciu uzasadnienia chemotaksonomicznego. Mikrob. Fakt komórkowy. 2009. [Odsyłacz]

96. Dufossé, L. Encyclopedia of Microbiology, wyd. 3; Prasa akademicka: Nowy Jork, NY, USA, 2009; pigmenty mikrobiologiczne; s. 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: Skuteczna naturalna substancja zapobiegająca przedwczesnemu fotostarzeniu wywołanemu promieniowaniem UVA. Farmakologia skóry. Fizjol. 2004, 17, 232–237. [Odnośnik]

98. Becker, J.; Schafer R.; Kohlstedt, M.; Trudniej, BJ; Borchert, NS; Stoveken, N. Systems inżynieria metaboliczna Corynebacterium glutamicum do produkcji chemicznej ektoiny opiekuńczej. Mikrob. Fakt komórkowy. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. Genotoksyczność światła widzialnego (400–800 nm) i ocena fotoprotekcji przekroju, L-ergotioneiny i mannitolu oraz czterech filtrów przeciwsłonecznych. J. Photochem. Fotobiol. B. 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, I.; Nielsen, DR Inżynieria Escherichia coli do produkcji odnawialnego alkoholu benzylowego. Metab. inż. 2015, 2, 39–45. [Odnośnik]

101. Ni, J.; Tao, F.; Du, H.; Xu, P. Naśladowanie naturalnej ścieżki biosyntezy de novo: naturalna produkcja waniliny z dostępnych źródeł węgla. nauka Rep. 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Yamada, M.; Okada, Y.; Yoshida, T.; Nagasawa, T. Produkcja waniliny przy użyciu komórek Escherichia coli z nadekspresją monooksygenazy izoeugenolu z Pseudomonas putida. Biotechnologia. Łotysz. 2008, 30, 665–670. [Odnośnik]

103. Zhao, L.-Q.; Słońce, Z.-H.; Zheng, P.; Zhu, L.-L. Biotransformacja izoeugenolu do waniliny przez nowy szczep Bacillus fusiformis. Biotechnologia. Łotysz. 2005, 27, 1505–1509. [Odnośnik]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Główny wkład szlaku Ehrlicha w produkcję 2-fenyloetanolu/zapachu różanego u Ashbya gossypii. FEMS Drożdże Rez. 2014, 14, 833–844. [Odnośnik]

105. Eichmann, MMW; Schrader, J. Wodno-organiczny dwufazowy bioproces do wydajnej produkcji naturalnych substancji aromatycznych 2-fenyloetanolu i 2-fenylooctanu etylu z drożdżami. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2006, 71, 440–443. [Odnośnik]

106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen S.; Buhler, B.; Julsing, MK; Schmid, A. Inżynieria produktywności rekombinowanej Escherichia coli do tworzenia limonenu z glicerolu w minimalnych pożywkach. Biotechnologia. J. 2014, 9, 1000–1012. [Odnośnik]

107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, pne; Freire, G.; Almeida, RV Zwiększona produkcja ramnolipidów przez Pseudomonas aeruginosa z nadekspresją estA w prostym podłożu. PLOS ONE 2017, 12, e0183857. [Odnośnik]

108. Desai, JD; Banat, IM Mikrobiologiczna produkcja surfaktantów i ich potencjał komercyjny. Mikrobiol. Mol. Biol. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, T.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM Produkcja karotenoidów i ekspresja genów w zmutowanym szczepie Xanthophyllomyces dendrorhous produkującym astaksantynę. Łuk. Mikrobiol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, T.; Christou, P. Karotenoidy o znaczeniu odżywczym jako produkty konsumpcyjne. Fitochem. Obj. 2015, 14, 727–743. [Odnośnik]

111. Henriquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Karotenoidy w mikroalgach. W Karotenoidy w przyrodzie; Dziwne, E., wyd.; Springer International Publishing: Nowy Jork, NY, USA, 2016; s. 219–237.

112. Lau, N.-S.; Matsui, M.; Abdullah, AA-A. Cyjanobakterie: fotoautotroficzne fabryki drobnoustrojów do zrównoważonej syntezy produktów przemysłowych. J. Biomed. Biotechnologia. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. Das, A.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Och, DK; Kim, SW Aktualizacja produkcji karotenoidów drobnoustrojów: zastosowanie najnowszych narzędzi inżynierii metabolicznej. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2007, 77, 505–512. [Odnośnik]

114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, A.; Aguilar, CN Biotechnologiczna produkcja karotenoidów przez drożdże: przegląd. Mikrob. Fakt komórkowy. 2014. [Odsyłacz]

115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, H.; Liu S.; Kan, J.; Jin, C. Ostatnie postępy w endofitycznych egzopolisacharydach: produkcja, charakterystyka strukturalna, rola fizjologiczna i aktywność biologiczna. Węglowodany. Polim. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. Liu, F.; Ooi, VE; Chang, ST Wychwytywanie wolnych rodników przez ekstrakty polisacharydowe z grzybów. Nauka o życiu. 1997, 60, 763–771. [Odnośnik]

117. Jin, M.; Cai, YX; Li, JR; Zhao, H. 1,10-fenantrolina-Fe2 plus test oksydacyjny rodnika hydroksylowego wytwarzanego przez H2O2/Fe. Wałówka. Biochem. Biofiza. 1996, 23, 553–555.

118. Chen, B.; Ty, W.; Huang, J.; Yu, Y.; Chen, W. Izolacja i właściwości przeciwutleniające zewnątrzkomórkowego polisacharydu z Rhodella reticulata. Świat J. Microbiol. Biotechnologia. 2010, 26, 833–840. [Odnośnik]

119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Zarządzanie stresem oksydacyjnym przez mikroalgi. Móc. J. Physiol. Farmakol. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. Hassan, HM Cytotoksyczność rodników tlenowych i ewolucja dysmutaz ponadtlenkowych. W tlenie, ekspresji genów i funkcjach komórkowych; Massaro, D., Clerch, L., wyd.; Marcel Dekker: Nowy Jork, NY, USA, 1997.

121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Rola enzymów antyoksydacyjnych w odporności bakterii na kwasy organiczne. Aplikacja Otaczać. Mikrobiol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. Badania nad wolnymi rodnikami, przeciwutleniaczami i kofaktorami. Clin. Interw. Starzenie się 2007, 2, 219–236.

123. Abbott, DA; Suir, E.; Duong, GH; de Hulster, E.; Pronk, JT; van Maris, AJ Nadekspresja katalazy zmniejsza stres oksydacyjny wywołany kwasem mlekowym w Saccharomyces cerevisiae. Aplikacja Otaczać. Mikrobiol. 2009, 75, 2320–2325. [Odnośnik]

124. Shao, N.; Beck, CF; Lemaire, Dakota Południowa; Krieger-Liszkay, A. Fotosyntetyczny towarzysz elektronów wpływa na sygnalizację H2O2 poprzez inaktywację katalazy w Chlamydomonas reinhardtii. Planta 2008, 228, 1055–1066. [Odnośnik]

125. Komisja Europejska. Zakaz testów na zwierzętach. Dostępne online: https://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/animal-testing_en (dostęp: 14 kwietnia 2019 r.).

126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Microbial ultrafioletowe filtry przeciwsłoneczne. Nat. Wielebny Microbiol. 2011, 9, 791–802. [Odnośnik]

127. Płonka, PM; Grabacka, M. Synteza melaniny w mikroorganizmach - aspekty biotechnologiczne i medyczne. Acta Biochim. pol. 2006, 53, 429–443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. Melanina grzybowa: Co wiemy o strukturze? Przód. Mikrobiol. 2015. [Odsyłacz]

129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanina: fotoprotekcja biopestycydów na bazie Bacillus thuringiensis. Biotechnologia. Łotysz. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, K.; Nazififi, E.; Hirai, Y.; Wada, N.; Matsugo S.; Sakamoto, T. Cyjanobakteryjny pigment absorbujący promieniowanie UV, scytonemina, wykazuje aktywność wychwytującą rodniki. J. Gen. Appl. Mikrobiol. 2012, 58, 137–144. [Odnośnik]

131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, Dakota Północna; Castenholz, RW Dowody na ultrafioletową rolę pigmentu scytoneminy w ziemskich cyjanobakteriach Chlorogloeopsis sp. Fotochem. Fotobiol. 1992, 56, 17–23. [Odnośnik]

132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Cyjanobakteryjny filtr przeciwsłoneczny scytonemina: rola w fotoprotekcji i badaniach biomedycznych. Aplikacja Biochem. Biotechnologia. 2015, 176, 1551–1563. [Odnośnik]

133. Darśan, N.; Manonmani, HK Prodigiosin i jego potencjalne zastosowania. J. Nauka o żywności. Techno. 2015, 52, 5393–5407. [Odnośnik]

134. Duran, N.; Justo, GZ; Duran, M.; Brocchi, M.; Cordi, L.; Tasic, L. Postępy w Chromobacterium violaceum i właściwości violaceiny - jej głównego metabolitu wtórnego: przegląd. Biotechnologia. adw. 2016, 34, 1030–1045. [Odnośnik]

135. Colabella, F.; Moline, M.; Libkind, D. Filtry przeciwsłoneczne UV pochodzenia mikrobiologicznego: cyklosporyna i aminokwasy podobne do mykosporyny. Ostatni Pat. Biotechnologia. 2014, 8, 179–193. [Odnośnik]

136. Khosravi, S.; Khodabandeh, S.; Agh, N.; Bakhtiarian, M. Wpływ zasolenia i promieniowania ultrafioletowego na bioakumulację aminokwasów podobnych do mykosporyny w artemii z jeziora Urmia (Iran). Fotochem. Fotobiol. 2013, 89, 400–405. [Odnośnik]

137. Gorbuszyna, AA; Whitehead, K.; Dornieden, T.; Niesse, A.; Schulte, A.; Hedges, JI Czarne kolonie grzybów jako jednostki przetrwania: strzępki cyklosporyny syntetyzowane przez zamieszkujące skały grzyby mikrokolonialne. Móc. J. Bot. 2003, 81, 131–138. [Odnośnik]

138. Gillbro, JM; Olsson, MJ Melanogeneza i mechanizmy środków rozjaśniających skórę - istniejące i nowe podejścia. Int. J. Kosmet. nauka 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. Smit, N.; Vilanova, J.; Pavel, S. Polowanie na naturalne środki wybielające skórę. Int. J. Mol. nauka 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. Pillaiyar, T.; Manickam, M.; Namasivayam, V. Środki wybielające skórę: perspektywa chemii medycznej inhibitorów tyrozynazy. J. Enzyme Inhib Med. chemia 2017, 32, 403–425. [Odnośnik]

141. Pillaiyar, T.; Namasivayam, V.; Manickam, M.; Jung, SH Inhibitory melanogenezy: zaktualizowany przegląd. J. Med. chemia 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. Ha, TJ; Yang, MS; Jang DS; Choe, SU; Park, GH Hamujące działanie pochodnych flawanonu wyizolowanych z Sophora flavecens w celu melanogenezy. Byk. koreańska chemia. soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; Kang, M.; Chung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK Badanie i mechanizm działania środków odbarwiających i rozjaśniających skórę. Fitoteria. Rez. 2006, 20, 921–934. [Odnośnik]

144. Rosfarizan, M.; Mohd SM; Nurashikin, S.; Madihah, MS; Arbakariya, BA Kwas kojowy: Zastosowania i rozwój procesu fermentacji do produkcji. Biotechnologia. Mol. Biol. 2010, 5, 24–37.

145. Ortiz-Ruiz, CV; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Działanie kwasu elagowego na szlak biosyntezy melaniny. J. Dermatol. nauka 2010, 5, 24–37. [Odnośnik]

146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, A.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. Grzybowa biodegradacja garbników z krzewu kreozotu (Larrea tridentata) i krzewu smoły (Fluorensia cernua) do produkcji kwasu galusowego i elagowego. Technika żywności. Biotechnologia. 2008, 46, 213–217.

147. Sepúlveda, L.; Ascacio, A.; Rodríguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Kwas elagowy: właściwości biologiczne i rozwój biotechnologii dla procesów produkcyjnych. Afr. J. Biotechnologia. 2011, 10, 4518–4523.

148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, M.; Pasi, S.; Zina, G. Terapia kwasem azelainowym w zaburzeniach pigmentacji. Clin. Dermatol. 1989, 7, 106–119. [Odnośnik]

149. Sieber, MA; Hegel, JK Kwas azelainowy: Właściwości i sposób działania. Farmakologia skóry. Fizjol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS Przebarwienia melaninowe skóry: melasma, leczenie miejscowe kwasem azelainowym i inne terapie. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. Usuki, A.; Ohashi, A.; Sato, H.; Ochiai, Y.; Ichihashi, M.; Funasaka, Y. Hamujący wpływ kwasu glikolowego i kwasu mlekowego na syntezę melaniny w komórkach czerniaka. Do potęgi. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; Jin, B.; Kelly, JM Produkcja kwasu mlekowego z materiałów odnawialnych przez grzyby Rhizopus. Biochem. inż. J. 2007, 35, 251–263. [Odnośnik]

153. Liu, X.; Liu, F.; Liu S.; Li, H.; Ling, P.; Zhu, X. Poli-gamma-glutaminian z Bacillus subtilis hamuje aktywność tyrozynazy i melanogenezę. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2013, 97, 9801–9809. [Odnośnik]

154. Mohoricic, M.; Friedrich, J.; Renimel, I.; Andrzej, P.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Wytwarzanie enzymu wybielającego melaninę pochodzenia grzybowego i jego zastosowanie w kosmetyce. Biotechnologia. Bioproces. inż. 2007, 12, 200–206. [Odnośnik]

155. Antonopoulou, I.; Varriale S.; Topakas, E.; Rova, U.; Christakopoulos, P.; Faraco, V. Enzymatyczna synteza związków bioaktywnych o dużym potencjale zastosowania kosmeceutycznego. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2016, 100, 6519–6543. [Odnośnik]

156. Sugimoto, K.; Nomura, K.; Nishimura, T.; Kiso, T.; Sugimoto, K.; Kuriki, T. Syntezy alfa-arbutyno-alfa-glikozydów i ich działanie hamujące na ludzką tyrozynazę. J. Biosci. Bioeng. 2005, 99, 272–276. [Odnośnik]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipid biosurfactants-przeszłość, teraźniejszość i przyszły scenariusz rynku światowego. Przód. Mikrobiol. 2014. [Odsyłacz]

158. Marchant, R.; Banat, IM Biosurfactants: zrównoważony zamiennik chemicznych środków powierzchniowo czynnych? Biotechnologia. Łotysz. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Biosynteza lipidów ramnozy, produkcja drobnoustrojów i potencjał zastosowania. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 1999, 51, 22–32. [Odnośnik]

160. Haba, E.; Pinazo, A.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; Infante, MR; Manresa, A. Charakterystyka fizykochemiczna i właściwości przeciwdrobnoustrojowe ramnolipidów wytwarzanych przez Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Biotechnologia. Bioeng. 2003, 81, 316–322. [Odnośnik]

161. Piljac, G.; Piljac, T. Zastosowanie ramnolipidów w gojeniu się ran, leczeniu wstrząsu oparzeniowego, miażdżycy tętnic, przeszczepach narządów, depresji, schizofrenii i kosmetyce. Patent USA nr US7262171B1. 2000.

162. Tuli, HS; Chaudhary, P.; Beniwal, V.; Sharma, AK Pigmenty mikrobiologiczne jako naturalne źródła koloru: aktualne trendy i perspektywy na przyszłość. J. Nauka o żywności. Technika 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. Caro, Y.; Venkatachalam, M.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. Pigmenty i barwniki z grzybów nitkowatych. Metabolizm grzybów. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, LH; Santos, C.; Galvao, LR; Cardoso, PG Produkcja i charakterystyka chemiczna pigmentów w grzybach nitkowatych. Mikrobiologia 2016, 162, 12–22.

165. Rao, N.; Prabhu, M.; Xiao, M.; Li, WJ Pigmenty grzybowe i bakteryjne: metabolity wtórne o szerokim zastosowaniu. Przód. Mikrobiol. 2017. [Odsyłacz]

166. Kuddus, M.; Singh, P.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. Najnowsze osiągnięcia w produkcji i zastosowaniach biotechnologicznych C-fikocyjaniny. Biomed. Rez. Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, M. Microalgae Nutraceuticals. Żywność 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Heterotroficzne hodowle okresowe i ciągłe kultury Galdieria sulphuraria o dużej gęstości komórek i produkcja fikocyjaniny. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2007, 77, 69–75. [Odnośnik]

169. Carroll AL; Desai, SH; Atsumi, S. Mikrobiologiczna produkcja związków zapachowych i smakowych. bież. Opinia. chemia Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. Longo, MA; Sanromán, MA Produkcja związków aromatyzujących żywność: metodologie mikrobiologiczne i enzymatyczne. Technika żywności. Biotechnologia. 2006, 44, 335–353.

171. Kempf, B.; Bremer, E. Wychwyt i synteza kompatybilnych substancji rozpuszczonych jako reakcje na stres drobnoustrojów w środowiskach o wysokiej osmolalności. Łuk. Mikrobiol. 1998, 170, 319–330. [Odnośnik]

172. Soccol, CR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Związki smakowe wytwarzane przez grzyby, drożdże i bakterie. Handb. Produkcja żywności Wytw. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Bioflavours and perfumes via grzyby i ich enzymy. nurkowie grzybów. 2003, 13, 153–166.

174. Carrau, F.; Boido, E.; Dellacassa, E. Różnorodność drożdży i związki smakowe. W metabolitach grzybów; Merillon, JM, Ramawat, K., wyd.; Springer International Publishing: Cham, Szwajcaria, 2016; s. 1–29.

175. Priefert, H.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Biotechnologiczna produkcja waniliny. Aplikacja Mikrobiol. Biotechnologia. 2001, 56, 296–314. [Odnośnik]

176. Kunjapur, AM; Tarasowa, Y.; Prather, KLJ Synteza i akumulacja aldehydów aromatycznych w zmodyfikowanym szczepie Escherichia coli. J. Am. chemia soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; kąpiel, TS; Adams, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ Inżynieria metaboliczna Escherichia coli do produkcji limonenu i alkoholu perilylowego. Metab. inż. 2013, 19, 33–41. [Odnośnik]

178. Okino, T.; Qi, S.; Matsuda, H.; Murakami, M.; Yamaguchi, K. Nostopeptins A i B, inhibitory elastazy z cyjanobakterii Nostoc minutum. J. Nat. Szturchać. 1997, 60, 158–161. [Odnośnik]

179. Georgousaki, K.; DePedro, N.; Szynszyla, A.; Aliagiannis, N.; Vincente, F.; de Castro, P.; Fotinos, S.; Genilloud, O.; Fokialakis, N. Wysokowydajne badania przesiewowe różnorodności biologicznej drobnoustrojów w celu odkrycia nowych środków kosmeceutycznych. Panta Med. 2015. [Odsyłacz]

180. Georgousaki, K.; Tsafantakis, N.; Cheilari, A.; Gumeni, S.; González, I.; González, V.; José, RT; Genilloud, O.; Fotinos, S.; Trougakos, I.; i in. Odkrycie nowych środków kosmeceutycznych z endofitycznych mikroorganizmów hiszpańskiej bioróżnorodności. Planta Med. 2017. [Odsyłacz]

181. Sykiotis, GP; Bohmann, D. Aktywowane stresem czynniki transkrypcyjne cap'n'collar w starzeniu się i chorobach ludzi. nauka Sygnał. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. Wedel, S.; Manola, M.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. Ukierunkowanie na mechanizmy kontroli jakości białek za pomocą produktów naturalnych w celu promowania zdrowego starzenia się. Cząsteczki 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostasis i starzejący się proteom w zdrowiu i chorobie. J.Gerontol. Biol. nauka Med. nauka 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. Huang, L.; Chen, CH Regulatory proteasomu: aktywatory i inhibitory. bież. Med. chemia 2009, 16, 931–939. [Odnośnik]

185. Peyrat, Luizjana; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, M.; Stien, D. Kwas betulinowy, pierwszy triterpenoid typu łubinu wyizolowany zarówno z Phomopsis sp. i jego rośliny żywicielskiej Diospyros carbonara Benoist. chemia bioróżnorodni. 2017. [CrossRef] [PubMed]

Więcej informacji: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501